Transfekcja indukowalnego systemu ekspresji genów do komórek ekspresujących bakteryjne białko efektorowe

0 wyświetleń2:43 min. • November 28th, 2025

Sprawdź ludzkie komórki ekspresyjne CaeB, antyapoptotyczne białko bakteryjne.

Użyj komórek bez CaeB jako kontroli.

Wprowadź odczynnik transfekcyjny złożony z systemem ekspresji genów indukowanym tetracykliną, zawierającym zarówno plazmidy regulatorowe, jak i odpowiedziowe.

Plazmid regulatorowy koduje aktywator transkrypcji i tłumik, natomiast plazmid odpowiedzi koduje białko pro-apoptotyczne kontrolowane przez TRE.

Inkubuj komórki, aby ułatwić pobieranie plazmidów i ekspresję białek regulacyjnych.

Bez tetracykliny aktywator pozostaje nieaktywny, a tłumik tłumi transkrypcję sterowaną TRE.

Dodaj analog tetracykliny i inkubuj.

Analog umożliwia wiązanie aktywator–TRE, inicjując ekspresję białek pro-apoptotycznej.

W komórkach kontrolnych wywołuje to sygnalizację apoptotyczną, aktywując marker apoptotyczny.

W komórkach ekspresujących CaeB CaeB hamuje sygnalizację apoptotyczną, zmniejszając aktywację markerów.

Zmniejszona aktywacja markerów w komórkach ekspresujących CaeB sugeruje, że CaeB hamuje apoptozę.

Rozpocznij ten zabieg od zasiewania komórek HEK293 stabilnie wyrażających GFP lub GFP-CaeB w płytkach z 12 dołkami o gęstości 100 000 komórek na dołek.

Następnie przygotuj oddzielnie odczynnik transfekcyjny DNA i polietyliminy w 75 mikrolitrach medium Opti-MEM i inkubuj przez pięć minut w temperaturze pokojowej. Do tworzenia złożonych mieszanin inkubuj obie mieszaniny razem przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Następnie dodaj roztwór DNA polietyiminy kropelo do komórek i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza w stężeniu 5% dwutlenku węgla.

Pięć godzin po transfekcji indukuj ekspresję białek proapoptotycznych, dodając do pożywki jeden mikrogram na mililitr doksycykliny. Następnie inkubuj komórki przez 18 godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza w stężeniu 5% dwutlenku węgla.