Iniekcja do otrzewnewki bakteryjnego lipopolisacharydu u myszy w celu badania ogólnoustrojowych odpowiedzi immunologicznych

0 wyświetleń2:34 min • January 30th, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od oczbudzonej myszy, unieruchomionej, by ograniczyć jej ruchy.

Przechyl głowę w dół, aby odsłonić dolną część brzucha.

Zlokalizuj linię środkową brzucha i zidentyfikuj miejsce wkłucia lekko przesunięte od środka, aby uniknąć narządów wewnętrznych.

Następnie weź strzykawkę zawierającą roztwór lipopolisacharydów, będących składnikiem otoczki komórek bakteryjnej Gram-ujemnej.

Wkłuj igłę w miejsce, aby uzyskać dostęp do jamy otrzewnej, i wstrzyknij roztwór.

Po wstrzyknięciu LPS wchodzi do krążenia układowego i wywołuje odpowiedź immunologiczną.

We krwi LPS wiąże się z białkiem wiążącym LPS, które przenosi je do CD14, błonowego białka komórek odpornościowych.

CD14 dostarcza LPS do MD-2, glikoproteiny wiążącej się z receptorem Toll-podobnym 4 (TLR4), umożliwiając dimerizację TLR4.

Zdymeryzowany TLR4 rekrutuje białka adaptatorowe, które aktywują dalsze szlaki sygnalizacyjne, indukując prozapalną ekspresję cytokin i stany stanowe ogólnoustrojowe.

Modeluje to translokację mikroorganizmów oraz ogólnoustrojową aktywację immunologiczną w jelitach i innych narządach wywołaną przez produkty bakteryjne.

Delikatnie, ale stanowczo trzymaj mysz i unieruchamiaj zwierzę jedną ręką. Upewnij się, że mysz jest bezpiecznie trzymana i może normalnie oddychać.

Przechyl lekko nos myszy w stronę podłogi, aby odsłonić brzuch do wstrzyknięcia. Zlokalizuj linię środkową brzucha i wstrzyknij wymaganą objętość LPS po lewej lub dolnej lewej stronie.

Bardzo ważne jest, aby igła wchodziła do jamy otrzewnej, aby uniknąć błędnych zastrzyków.

Igła nie powinna również wchodzić zbyt głęboko w jamę otrzewnej, aby uniknąć urazu narządów wewnętrznych.

Delikatnie odłóż zwierzę do klatki domowej.

Monitoruj myszy pod kątem występowania i nasilenia endotoksemii w momencie wstrzyknięcia, a następnie co 2 godziny przez 8 godzin. Zapisz obserwacje w załączonej arkuszu wyników.

06:39

Podostre mikrokrwotoki mózgowe wywołane wstrzyknięciem lipopolisacharydu u szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:31

Mikroiniekcje lipopolisacharydu do komór mózgowych larwom danio pręgowanego w celu oceny zapalenia nerwów i neurotoksyczności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:38

Przygotowanie mysiego modelu ciężkiego ostrego zapalenia trzustki za pomocą kombinacji ceruleiny i lipopolisacharydu we wstrzyknięciu dootrzewnowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:51

Wewnątrzprzewodowe wstrzyknięcie LPS jako mysi model zapalenia wymion: wizualizacja sygnalizacji za pomocą transgenicznego reportera NF-κB

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:38

Lipopolysaccharide-Induced Acute Lung Injury in Mice for Exosome and Immune Analysis

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:05

Aktywacja in vivo makrofagów otrzewnowej w odpowiedzi na przeciwciała w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:52

Podskórne wstrzyknięcie antygenu bakteryjnego w celu wywołania ogólnoustrojowego stanu zapalnego w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:33

Immunoterapia dolimfatyczna i szczepienie u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:06

Dwufotonowe obrazowanie przyżyciowe leukocytów podczas odpowiedzi immunologicznej w wątrobie myszy leczonej lipopolisacharydem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:24

Wstrzykiwanie lipopolisacharydu myszom w celu naśladowania wnikania produktów pochodzenia mikrobiologicznego po naruszeniu bariery jelitowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026