Model myszy do badania patogennej przejścia paciorkowca pneumoniae po współinfekcji wirusowej

0 wyświetleń3:17 min • March 31st, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od Streptococcus pneumoniae hodowanego w biofilmie, bezobjawowego kolonizatora nosowo-gardła, zawieszonego w buforze

Podawaj zawiesinę downętrznie myszy bez znieczulenia, umożliwiając wdychanie do górnych dróg oddechowych.

W nabłonku nosowogardłowym bakterie tworzą biofilm, który ułatwia kolonizację i hamuje produkcję cytokin przeciwwirusowych przez komórki gospodarza.

Po znieczuleniu wyprostuj język myszy, aby uzyskać dostęp do tchawicy.

Podawaj wirusa grypy A do tchawicy, aby zainfekować dolne drogi oddechowe.

Po wyzdrowieniu myszy natychmiast zaszczepić wirusa donosowo, aby zaatakować górne drógi oddechowe.

Infekcja wirusowa zaburza układ odpornościowy gospodarza i uszkadza tkankę śluzową, wywołując rozprzestrzenianie się bakterii do dolnych dróg oddechowych.

W środowisku płuc zmienionym przez wirusa bakterie przechodzą w inwazyjne patogeny, wywołując stan zapalny płuc i rozprzestrzenianie się ogólnoustrojowo.

Infekcja hamuje również funkcję neutrofili, zmniejszając usuwanie bakterii.

Ten model współinfekcji umożliwia badanie interakcji gospodarz-mikroorganizmy.

Rozmroz biofilm wyhodowany aliquot na lodzie i obróć się z 1700 g przez pięć minut. Ostrożnie usuń i wyrzuć supernatant, nie zakłócając osadu. Następnie myj granulat, ponownie zawieszając go w 1 mililitrze PBS i ponownie go zawiruj. Usuń supernatant i ponownie zawiesij pellet w objętości potrzebnej do osiągnięcia pożądanego stężenia.

Zaszczepić czarnego sześciu samców myszy C57 downętrznie z 5 razy 10 do szóstej jednostki tworzącej kolonię (CFU), pipetując 5 mikrolitrów rozcieńczonego inokulum do każdego naris. Po zaszczepieniu trzymaj mysz mocno, stabilizując głowę aż do wdychania objętości. Po rozmrożnięciu wirusa rozcieńcz go w PBS do pożądanego stężenia.

Nałóż oczy na oczy myszy przed znieczuleniem. Natychmiast zainfekowaj znieczuloną mysz 50 mikrolitrami 20 jednostek tworzących płytki nazębne (PFU) wirusa grypy A lub IAV dotrachealnie, używając tępych pęset, aby wyciągnąć język z ust i pipetować objętość płynu w dół tchawicy. Po wyzdrowieniu należy donosowo zaszczepić 10 mikrolitrów 200 PFU IAV metodą inokulacji opisaną wcześniej.

07:43

Nieinwazyjna i technicznie nieintensywna metoda indukcji i fenotypowania eksperymentalnego bakteryjnego zapalenia płuc u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:19

Mysi model kolonizacji pochwy paciorkowcami grupy B

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:32

Mysi model aspiracji jamy ustnej i gardła bakteryjnego zapalenia płuc związanego z respiratorem i nabytego w szpitalu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:47

Wykorzystanie obrazowania bioluminescencyjnego do zbadania synergii między Streptococcus pneumoniae a wirusem grypy A u niemowląt myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:16

Przetwarzanie zakażonych tkanek do enumeracji bakterii w modelu współinfekcji myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:12

Charakterystyka reakcji zapalnych podczas kolonizacji donosowej Streptococcus pneumoniae

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:32

Śledzenie w czasie rzeczywistym wpływu czynników wirulencji pneumokoków w modelu ostrego mysiego zapalenia płuc z wykorzystaniem bakterii bioluminescencyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:52

Mysi model przewlekłego stanu zapalnego wywołanego przez patogeny w miejscach lokalnych i ogólnoustrojowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:25

Wizualizacja Streptococcus pneumoniae w obrębie mikrouszkodzeń serca i późniejsza przebudowa serca

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:44

Badania wirusa grypy A w mysim modelu infekcji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026