Ocena wpływu inhibitorów na tworzenie pelikuli u Bacillus subtilis

0 wyświetleń2:57 min • February 26th, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od hodowli Bacillus subtilis, bakterii glebowej, uprawianej w bogatym w składniki odżywcze.

Wirówkuj, aby rozpylić bakterie, wyrzuć supernatant, a następnie ponownie zawiesić granulek w chemicznie zdefiniowanym medium wspierającym tworzenie biofilmu.

Zmierz gęstość optyczną hodowli, aby określić odpowiednie stężenie bakterii.

Dodaj hodowlę do dołków zawierających zdefiniowane medium dla kontroli oraz zdefiniowane medium z inhibitorem do testu.

Inkubuj w warunkach statycznych. Bakterie migrują w górę i gromadzą się na granicy powietrze-ciecz, gdzie zwiększona dostępność tlenu sprzyja rozwojowi bakterii.

W studni kontrolnej bakterie na styku wydzielają składniki macierzy zewnątrzkomórkowej i tworzą unoszący się biofilm zwany pellicle, warstwę ochronną wspierającą przeżycie bakterii.

W studni testowej inhibitor zakłóca syntezę matrycy, co skutkuje rozproszeniem populacji bakteryjnych.

Ten test pokazuje, że inhibitory blokują tworzenie biofilmu, co jest kluczową cechą patogenezy bakterii.

Najpierw wybierz odpowiednią pojedynczą kolonię i przelej ją do 3 mililitrów bulionu LB. Włóż tę hodowlę do inkubatora do potrząsania na 4 godziny w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po inkubacji należy pobrać 1,5 mililitra hodowli startowej i wirować przez cztery minuty.

Ostrożnie usuń supernatant, a następnie ponownie zawiesij granulat w 1,5 mililitra medium MSgg. Aby uprawiać pellicle, przygotuj płytkę do hodowli komórek z 12 dołkami, dodając do każdego dołku 3 mililitry MSgg. Do niektórych z tych studni dodaj MSgg z inhibitorem małych cząsteczek w określonym zakresie stężenia, rozkładając różne stężenia wokół naczynia, aby uniknąć efektu brzegowego.

Zmierz gęstość optyczną na 600 nanometrów ponownie zawieszonej hodowli startowej. Kultura powinna być między 0,6 a 1. Jest to kluczowe dla odporności systemu.

Zaszczep każdą jamkę płyty hodowli 3 mikrolitrami ponownie zawiesiowanej hodowli startowej. Następnie inkubuj płytę w temperaturze 23 stopni Celsjusza przez trzy dni w warunkach stacjonarnych. Następnie wyjmij płytkę z inkubatora i obserwuj pelikule.

07:47

Przeciwzjadliwe rozbijanie patogennych biofilmów za pomocą zaprojektowanych laktonaz gaszących kworum

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:00

Celowanie w Staphylococcus aureus związany z biofilmem za pomocą testu wrażliwości na leki opartego na resazurynie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:47

Ocena skuteczności organicznych nadtlenokwasów w zwalczaniu biofilmu mlecznego przy użyciu podejścia łączącego metody statyczne i dynamiczne

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:28

Analiza pojedynczych komórek biofilmów Bacillus subtilis przy użyciu mikroskopii fluorescencyjnej i cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:38

Ilościowe tłumienie biofilmu indukowanego enzymami u bakterii patogennych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:47

Mikroskopowa ocena hamowania powstawania biofilmu przez enzymy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:37

Test odroczonego hamowania wzrostu w celu oceny wpływu związków przeciwdrobnoustrojowych pochodzenia bakteryjnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:50

Testy jakościowe i ilościowe do wykrywania i charakterystyki białkowych środków przeciwdrobnoustrojowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Test odroczonego hamowania wzrostu w celu ilościowego określenia wpływu środków przeciwdrobnoustrojowych pochodzenia bakteryjnego na konkurencję

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:17

Metodologie badania biofilmów B. subtilis jako modelu charakteryzującego małocząsteczkowe inhibitory biofilmu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026