Ilościowa identyfikacja Clostridium difficile w próbkach kału z modelu zakażonego myszy

0 wyświetleń3:08 min • March 31st, 2026

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od myszy, której przewód pokarmowy jest kolonizowany przez Clostridium difficile, beztlenowego, zarodnikowego bakteriowirusa.

Unieruchom mysz i pozwól jej naturalnie wypróżnić się do sterylnej, wcześniej zważonej rurki.

Określ masę netto próbki kału, odejmując masę pustej probówki od całkowitej masy, aby przygotować odpowiednie rozcieńczenia.

Przenieś próbkę do środowiska beztlenowego, aby zachować żywotność bakterii wrażliwej na tlen.

Dodaj bufor do próbki i mechanicznie ją rozbij, aby uwolnić jej zawartość do zawiesiny.

Inkubować, aby umożliwić osad większych zanieczyszczeń, zatrzymując komórki bakteryjne i zarodniki w supernatancie.

Wykonaj szeregowe rozcieńczenia supernatantu w buforze.

Nakładaj rozcieńczenia na podłoże selektywne i inkubuj w warunkach beztlenowych.

Podłoże sprzyja kiełkowaniu zarodników i selektywnemu wzrostowi Clostridium difficile , jednocześnie hamując konkurencyjne bakterie, co skutkuje powstawaniem odrębnych kolonii.

Policz kolonie, aby ilościowo określić ładunek Clostridium difficile w kałach i ocenić kolonizację pokarmową.

Aby pobrać próbki kału od myszy do oceny, najpierw delikatnie, ale stanowczo unieruchom badaną mysz za luźną skórę na szyi i plecach, aby upewnić się, że zwierzę nie jest w stresie.

Używając małego palca, delikatnie unieś ogon zwierzęcia, odsłaniając odbyt. Trzymaj sterylną rurkę mikrowirówki o znanej masie bezpośrednio pod odbytem zwierzęcia, upewniając się, że rurka nie dotyka myszy bezpośrednio. Gdy zwierzę wypróżnia się, zbierz granulki kałowe do rurki.

Przechowuj probówkę w temperaturze pokojowej, aż zostaną zebrane wszystkie potrzebne próbki. Waż probówki zawierające kał na wadze analitycznej i zapisz masę do czterech miejsc po przecinku. Oblicz masę pelletu kałowego, odejmując wagę rurki.

Następnie obliczam rozcieńczenie od jednego do dziesięciu i ponownie zawieszamy na 1x PBS. Użyj końcówki pipety, aby delikatnie rozbić kał do roztworu. Inkubuj próbki w temperaturze pokojowej przez 30 minut, pozwalając zawartości się osadzić.

Utrzymując roztwory beztlenowo, wykonuj rozcieńczenia seryjne dla każdej próbki w 1x PBS. Przelej 100 mikrolitrów każdej seryjnej rozcieńczenia na płytki TCCFA. Użyj sterylnego rozprowadzacza w kształcie litery L i równomiernie nakładaj medium na płytki.

Inkubuj płytki w warunkach beztlenowych w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 24 godziny. Na koniec wylicz kolonie C. difficile i oblicz jednostkę tworzącą kolonię na gram zawartości kału.

12:58

Protokół charakteryzujący zmiany morfologiczne Clostridium difficile w odpowiedzi na leczenie antybiotykami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:12

Test mikromacierzy białkowej do serologicznego oznaczania odpowiedzi przeciwciał specyficznych dla antygenu po zakażeniu Clostridium difficile

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:13

Opracowanie modelu zakażenia larw danio pręgowanego w kierunku Clostridioides difficile

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:42

Ilościowa ilościowa ilość obciążenia bakteryjnego tkanki w modelu myszy przewlekłej infekcji jelit

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:16

Przetwarzanie zakażonych tkanek do enumeracji bakterii w modelu współinfekcji myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

01:45

Wizualizacja metabolitów aminokwasów w tkankach jelit zakażonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:27

Ustanowienie mysiego modelu infekcji Clostridium difficile

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:52

Quantification of Bacterial Load in Mouse Spleen and Liver After Systemic Infection

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:04

Mysi model Citrobacter rodentium: badanie udziału patogenów i gospodarza w zakaźnym zapaleniu jelita grubego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:38

Multimodalne obrazowanie 4D zakażeń Citrobacter rodentium u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026