Test fluorescencyjny do badania interakcji receptorów makrofagów z antygenami bakteryjnymi

0 wyświetleń2:48 min • March 31st, 2026

Zacznij od czerwonego fluoroforu oznaczonego M. antygeny gruźlicy unieruchomione na polimerowej pokrywce.

Dodaj bufor blokujący blokujący nieokreślone miejsca wiązania. Umyj, żeby usunąć nadmiar blokera.

Wprowadź całkowite białko ekstrahowane z ludzkich makrofagów, w tym receptor powierzchniowy komórki, który jest przedmiotem zainteresowania. Inkubuj.

Receptory makrofagów wiążą się z unieruchomionymi antygenami bakteryjnymi.

Dodaj łącznik krzyżowy, aby ustabilizować kompleksy receptor–antygen, a następnie chłodnik neutralizujący niezareagowane łączniki.

Umyj i dodaj drugi łącznik, aby wzmocnić kompleksy.

Umyj jeszcze raz. Następnie zdejmij pokrywkę i odwróć ją na roztwór przeciwciał pierwotnych.

Przeciwciała wiążą się z receptorem makrofagów zainteresowanych.

Opłucz i odwróć pokrywę na zielony roztwór przeciwciał wtórnych sprzężonych z fluoroforem, który wiąże się z przeciwciałami pierwotnymi.

Umyj i zamontuj pokrywkę.

Zwizualizuj próbkę pod mikroskopem fluorescencyjnym. Współzlokalizowane sygnały czerwone i zielone potwierdzają interakcję między receptorem makrofagów a antygenem bakteryjnym.

Za pomocą chirurgicznych pęsety o okrągłym nosku umieść 12-milimetrowe okrągłe pokrywki do dołków płytki hodowli z 24 dołkami.

Inkubuj pokrywkę antygenami rodaminy Mycobacterium tuberculosis przez 1 godzinę w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po inkubacji dodaj 100 mikrolitrów ekstraktu białkowego rozcieńczonego w 300 mikrolitrach PBS i inkubuj przez 2 godziny w temperaturze pokojowej z mieszaniem. Owiń pokrywkę talerza z kulturą w folię parafinową.

Na pokrywkę pokrytą folią parafinową należy nałożyć 60-mikrolitrową kroplę wcześniej dozowanego pierwotnego przeciwciała anty-SLAMF1. Ostrożnie zdejmij pokrywkę z płytki za pomocą zakrzywionych, cienkokońcówkowych chirurgicznych pęsety i igieł. Po inkubacji z roztworem przeciwciał pierwotnych i wtórnych usuń nadmiar płynu i zamontuj pokrywę na kroplę płynu umieszczoną na szklanym szkiełku. Umieść preparat pod mikroskopem fluorescencyjnym i obserwuj komórki za pomocą odpowiednich filtrów.

08:55

Wizualizacja wewnątrzkomórkowego transportu SNARE za pomocą mikroskopii obrazowania czasu życia fluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:43

Test spektroskopii fluktuacji fluorescencji interakcji białko-białko na styku komórka-komórka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:12

Dwukolorowa spektroskopia korelacji krzyżowej fluorescencji w celu zbadania interakcji białko-białko i dynamiki białek w żywych komórkach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:26

Analysis of Macrophage Receptor Interactions with Pathogenic Bacteria Using Flow Cytometry

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:05

Test przyciągania makrofagów Transwell oparty na fluorescencji: metoda in vitro do badania interakcji guza-makrofag poprzez chemotaksję indukowaną chemicznie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:44

Wykrywanie aktywacji inflamasomu za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:28

Mikroskopowy test fenotypowy do oznaczania ilościowego prątków wewnątrzkomórkowych przystosowany do badań przesiewowych o wysokiej przepustowości/wysokiej zawartości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:22

Wysokoprzepustowa technika fluorometryczna do oceny fagocytozy makrofagów i polimeryzacji aktyny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:07

"Test zamykania fagosomu" do wizualizacji powstawania fagosomów w trzech wymiarach przy użyciu mikroskopii fluorescencyjnej z całkowitym wewnętrznym odbiciem (TIRFM)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:27

Zastosowanie jednowarstwowego testu monocytowego monocytów do oceny fagocytozy za pośrednictwem receptora Fcγ

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026