RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Lizat komórkowy, czyli płyn zawierający lizowaną zawartość komórek, znajduje zastosowanie w dalszych procesach, takich jak ekstrakcja i analiza białek. Badanie tych frakcji ujawnia informacje o cechach i funkcjach komórek.
Aby przygotować lizaty białek organoidowych, zacznij od kultury organoidów wyhodowanych w pożądanej macierzy błony podstawnej. Usuń zużytą pożywkę hodowlaną z naczynia. Dodaj ciepłe podłoże zawierające proteazy na matrycę. Pipetować kilkakrotnie, aby usunąć matrycę z naczynia.
Inkubować mieszaninę. Enzymy proteolityczne w pożywkach degradują macierz i uwalniają organoidy do roztworu. Odwirować próbkę, aby oddzielić organoidy od supernatantu zawierającego enzym.
Zawiesić osad organoidowy w odpowiednim buforze do lizy białek. Przeprowadzić inkubację próbki. Detergenty zawarte w buforze rozrywają błony komórkowe organoidów, uwalniając zawartość wewnątrzkomórkową do roztworu. Jednocześnie inhibitory białek w buforze dezaktywują wszelkie uwolnione enzymy proteazy i fosfatazy, zapobiegając degradacji ich białek substratowych.
Następnie należy poddać mieszaninę sonikacji, aby całkowicie rozbić komórki. Otoczka jądrowa pęka i uwalnia białka jądrowe do roztworu. Fale dźwiękowe ścinają również uwalniane kwasy nukleinowe, zapobiegając ich zanieczyszczeniu lizatu białkowego.
Aby zebrać organoidy, należy kilkakrotnie przedmuchać żel matrycowy, pipetując 1 mililitr wstępnie podgrzanego podłoża zawierającego dyspazę bezpośrednio na pierścień żelowy matrycy, aż cały pierścień zostanie usunięty. Przenieś usuniętą mieszaninę organoidów żelu matrycowego do 1,5-mililitrowej probówki mikrowirówkowej. Po całkowitym rozpaleniu, zgodnie z opisem w protokole tekstowym, dodać sól fizjologiczną buforowaną fosforanami do osadu organoidowego i ponownie zawiesić przez delikatne strzepnięcie.
Osadzać organoidy przez odwirowanie przy 800 x g przez 5 minut w temperaturze pokojowej i usunąć supernatant za pomocą mikropipety. Zawiesić osady organoidów w 100 mikrolitrach buforu do lizy białek na 10 mikrolitrów objętości upakowanych komórek. Przesuń, aby ponownie zawiesić. Teraz należy poddać organoidy działaniu sonikacji, zanurzając probówki w mokrym lodzie i delikatnie przykładając końcówkę dysmembratora sonicznego na zewnątrz probówki do mikrowirówki. Sonikuj przez 40 sekund przy 20 kHz przed przystąpieniem do western blot z ustalonymi protokołami.
Related Videos
08:59
Related Videos
8.2K Views
08:15
Related Videos
6.3K Views
09:57
Related Videos
9.8K Views