Ekstrakcja białek i proteoliza: metoda pozyskiwania białek z próbek tkanki guza prostaty i ich enzymatycznego trawienia do peptydów

0 wyświetleń4:03 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od próbki tkanki guza prostaty. Zawieś go ponownie w schłodzonym buforze do lizy, aby zainicjować lizę komórek. Użyj homogenizatora, aby dalej rozbić struktury tkankowe i uwolnić ich składniki wewnątrzkomórkowe. Sonikować próbkę na lodzie, aby zapewnić całkowitą lizę komórek i ścinać DNA, aby zapobiec zakłóceniom podczas przetwarzania peptydów. Podgrzej lizat, aby zakłócić trzeciorzędową strukturę białek i rozwinąć się.

Środki redukujące w buforze rozszczepiają wiązania dwusiarczkowe między resztą cysteiny. Następnie środki alkilujące w buforze alkilują wolne grupy tiolowe zredukowanych cystein, aby zapobiec tworzeniu się wiązań dwusiarczkowych. Dodatkowe czynniki denaturujące w buforze ułatwiają kontrolowaną denaturację i dalsze rozwijanie białek.

Wirówka do granulowania resztek tkanek i wszelkich zanieczyszczeń. Zebrać supernatant zawierający mieszaninę białek do świeżej probówki. Dodaj enzym endopeptydazę lizylową, aby rozszczepić wiązania peptydowe w białkach na końcu C reszt lizyny, tworząc duże peptydy. Ponadto potraktuj enzymem trypsyną, aby rozszczepić wiązania peptydowe na końcu C reszt lizyny i argininy i wytworzyć mniejsze peptydy. Przenieść mieszaninę do odśrodkowego zespołu filtrującego.

Odwirować, aby strawione peptydy mogły przeniknąć przez pory membrany filtracyjnej i zebrać się w postaci przepływu. Wszelkie większe fragmenty pozostają jako retentat.

Aby pobrać tkankę nowotworową, zważ guz i w probówce do hodowli dodaj 2 mililitry lodowatego buforu do lizy na każde 100 miligramów tkanki. Następnie użyj homogenizatora ręcznego lub stołowego, aby homogenizować lizat.

Aby zredukować i zalkilować próbkę, podgrzej probówkę w temperaturze 95 stopni Celsjusza przez 5 minut, a następnie schłodzić próbkę na lodzie przez 15 minut. Będąc jeszcze na lodzie, poddaj lizat sonikacji trzy razy. Następnie podgrzewaj próbkę w temperaturze 95 stopni Celsjusza przez 5 minut.

Umieść tę probówkę sonikacyjną w wahadłowym wirniku kubełkowym i odwiruj lizat przy 3,500 x g i 15 stopniach Celsjusza przez 15 minut. Następnie zebrać supernatant i wyrzucić osad. Aby roztrawić lizat, użyj 100-milimolowego Tris, aby rozcieńczyć próbkę 12-krotnie, aby zmniejszyć ilość guanidyny. Aby uzyskać 5 miligramów białka, dodaj 10 mikrogramów endopeptydazy lizylowej lub Lys-C i inkubuj próbkę w temperaturze pokojowej przez 5 do 6 godzin.

Przygotuj 1 miligram na mililitr trypsyny poddanej działaniu TPCK w 1 milimolowym HCl z 20-milimolowym chlorkiem wapnia i trypsyną dodanymi w stosunku 1 do 100 trypsyny do białka. Inkubować próbkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 3 godziny. Następnie dodaj dodatkową porcję trypsyny do probówki i inkubuj próbkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc.

Dodaj próbkę do 15-mililitrowego filtra odcinającego o sile 10 kDa. Odwirować próbkę w wahadłowym wiadrze lub wirniku o stałym kącie nachylenia przy 3 500 x g i temperaturze 15 stopni Celsjusza, aż objętość retentatu będzie mniejsza niż 250 mikrolitrów. Następnie zebrać przepływ i wyrzucić retentat.

08:09

Przebieg metaproteomiki mikrobiologicznej organizmów wodnych: od komórek do peptydów tryptycznych odpowiednich do analizy opartej na tandemowej spektrometrii mas

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:28

Wzbogacanie białek macierzy zewnątrzkomórkowej z tkanek i trawienie do peptydów do analizy spektrometrii mas

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Charakterystyka białek komórkowych za pomocą szybkiego fotochemicznego utleniania białek w komórce

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:21

Oczyszczanie peptydów: technika ekstrakcji peptydów z trawionych lizatów białkowych oparta na RP-HPLC

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:33

Wzbogacanie fosfopeptydów na bazie dwutlenku tytanu: metoda selektywnej izolacji fosfopeptydów z biblioteki peptydów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:20

Przygotowanie próbki proteomicznej z tkanki utrwalonej formaliną i zatopionej w parafinie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:08

Ilościowe profilowanie spektrometryczne mas proteomów komórek nowotworowych pochodzących z guzów płynnych i litych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:23

Wzbogacanie fosfopeptydem w połączeniu z bezznacznikową ilościową spektrometrią mas w celu zbadania fosfoproteomu w raku prostaty

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:13

Sekwencjonowanie małego niekodującego RNA z tkanek utrwalonych formaliną i egzosomów pochodzących z surowicy od pacjentów z opornym na kastrację rakiem prostaty

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:40

Podejście proteomiczne oparte na spektrometrii mas do globalnej i wysoce wiarygodnej analizy R-metylacji białek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026