Przygotowanie całego mocowania jelita myszy: Użycie prostego urządzenia do nacinania jelit w celu przygotowania całego wierzchowca

0 wyświetleń4:32 min • April 30th, 2023

Analiza całościowa pozwala na wizualizację wielowymiarowych przekrojów tkanek przy jednoczesnym zachowaniu interakcji strukturalnych między komórkami i ich mikrośrodowiskiem.

Aby przygotować całe wierzchowce jelita, zacznij od świeżo pobranego jelita myszy. Usuń krezkę - fałdy tkanki otrzewnej - z jelita. Przepłucz jelito schłodzonym buforem, aby usunąć wszelkie kały.

Następnie wytnij jelito ślepe. Rozetnij jelito na równe segmenty. Wykonaj małe nacięcia w segmentach jelitowych, aby spuścić znajdujący się w nich płyn

.

Delikatnie włóż mokry pręt ze stali nierdzewnej do segmentów jelitowych. Teraz umieść te pręty w szczelinach mocujących u podstawy niestandardowego urządzenia do nacinania jelit. Załóż pokrywę urządzenia na jego podstawę.

Używając kątowych prętów na pokrywie jako prowadnicy, naciąć wzdłużnie segmenty jelita. Zdejmij pokrywę z urządzenia. Zwilż segmenty. Delikatnie przetocz pręt na boki, aby zwolnić i rozłożyć segmenty na płasko.

Zanurzyć segmenty w kąpieli zawierającej odpowiedni utrwalacz i inkubować przez żądany czas. Utrwalacz chemicznie zachowuje strukturę komórkową i architekturę tkanek do późniejszego pobierania próbek.

Po utrwaleniu należy przechowywać tkankę w etanolu do czasu dalszej analizy.

W tej procedurze wykorzystuje się urządzenie składające się z podstawy, która ma wysoko uniesione paski na każdym końcu z rowkami do pobierania prętów i pokrywy. Po pobraniu jelita cienkiego i okrężnicy od dorosłej myszy przytrzymaj krezkę zakrzywionymi kleszczami i delikatnie odciągnij tkankę od jelita, aby ją usunąć. Umieść końcówkę pipety typu Gilson, przeciętą na szerszym końcu, na 10- lub 20-mililitrowej plastikowej strzykawce typu luer i przepłucz jelita zimnym PBS.

Po umyciu tkanki ułóż jelito cienkie i okrężnicę na ręczniku papierowym i nożyczkami podziel jelito cienkie na trzy równe części. Wykonaj kilka bardzo małych nacięć w segmentach jelitowych, aby odprowadzić płyn. Następnie połóż kolejny ręcznik papierowy na jelitach i delikatnie przesuń palcem po segmentach, aby wycisnąć pozostały płyn.

Następnie osusz preparaty do sucha i delikatnie włóż do tkanek pręty ze stali nierdzewnej nasączone PBS. Za pomocą ołówka utwórz etykiety dla segmentów, w tym datę autopsji, kod eksperymentalny i numer identyfikacyjny zwierzęcia. Umieść etykiety w podstawie urządzenia. Następnie włóż pręciki i jelita do szczelin u podstawy urządzenia, uważając, aby proksymalny koniec segmentów był umieszczony w znormalizowany sposób w pobliżu etykiet.

Teraz umieść górną część urządzenia nad podstawą i użyj kątowych prętów, aby poprowadzić ostrze skalpela wzdłużnie przez segmenty. Aby utrzymać tkankę na miejscu podczas cięcia, ostrożnie przytrzymaj segmenty palcem, aby nie poruszały się nożem.

Po wykonaniu wszystkich sekcji zdejmij górną część urządzenia i za pomocą kawałka sztywnej karty ostrożnie usuń bibułę filtracyjną i chusteczki. Używając opuszka palca w rękawiczce zanurzonego w PBS, lekko zwilż segmenty. Delikatnie zwiń pręt z boku na bok, aby otworzyć jelito i rozłożyć tkankę płasko.

Sekcje będą przylegać do bibuły filtracyjnej. Po oględzinach preparatów pod kątem ewentualnych poważnych zmian chorobowych, przenieść bibułę filtracyjną do płytkiej kąpieli z utrwalaczem. Po utrwaleniu tkanek przenieś je do 70% etanolu w celu przechowywania do czasu dalszej analizy.

11:26

In Situ Ca2+ Obrazowanie jelitowego układu nerwowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:22

Cięcie gruczołu sutkowego w całości w celu identyfikacji zmian chorobowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:51

Znakowanie immunofluorescencyjne mikrotubul i białek centrosomalnych w tkance jelitowej ex vivo oraz organoidy jelitowe 3D in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:45

Inżynieria tkankowa jelita w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:46

System hodowli całego jelita moczowego u myszy płodu do manipulacji ex vivo szlakami sygnałowymi i trójwymiarowego obrazowania na żywo rozwoju kosmków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:49

Proste urządzenie do szybkiego przygotowania całych wierzchowców jelita myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:16

Metoda kriosekcji do mikrodysekcji mysiej błony śluzowej okrężnicy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:48

Protokoły analizy roli komórek Panetha w regeneracji jelita mysiego przy użyciu warunkowych modeli myszy Cre-lox

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:41

Obrazowanie wideo i mapy czasoprzestrzenne do analizy motoryki przewodu pokarmowego u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Ulepszona technika walcowania szwajcarskiego do przygotowania tkanki jelitowej do analiz immunohistochemicznych i immunofluorescencyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026