$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Blaszka właściwa jelitowa, znajdująca się poniżej nabłonka jelitowego, składa się z luźnej tkanki łącznej wraz z gęstą siecią włókien kolagenowych zawierających różnorodny szereg komórek, takich jak fibroblasty, komórki jednojądrzaste, w tym limfocyty i monocyty. Komórki te odgrywają kluczową rolę w utrzymaniu homeostazy.
Aby wyizolować komórki jednojądrzaste, zacznij od pobrania fragmentów okrężnicy myszy. Fragmenty należy traktować buforem wytrawiającym zawierającym enzymy kolagenazy. Enzymy kolagenazy trawią włókna kolagenowe w tkance, uwalniając komórki do zawiesiny.
Zebrać supernatant i przefiltrować go przez sitka komórkowe w celu usunięcia niestrawionej tkanki i zanieczyszczeń oraz uzyskania zawiesiny jednokomórkowej. Dodać schłodzony bufor do filtratu w celu inaktywacji enzymów kolagenazy.
Odwirować, aby oddzielić komórki. Odrzucić supernatant zawierający enzymy i ponownie zawiesić osad komórkowy w pożywce separacyjnej na bazie krzemionki o niskiej gęstości. Następnie nałóż zawiesinę na podłoże separacyjne na bazie krzemionki o dużej gęstości, aby utworzyć gradient separacji.
Odwirować mieszaninę. Komórki jednojądrzaste osadzają się i tworzą białą warstwę na granicy między warstwami gradientu gęstości. Ostrożnie przenieś białą warstwę interfejsu do świeżej probówki zawierającej odpowiedni bufor.
Odwirować w celu uzyskania osadu zawierającego oczyszczone komórki jednojądrzaste. Ponownie zawiesić osad w buforze w celu dalszej analizy.
Na początek dodaj 20 mililitrów buforu do trawienia kolagenazy do probówki zawierającej umyte fragmenty okrężnicy. Zamknij probówkę i umieść ją w wytrząsarce orbitalnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza z prędkością obrotową 2 x g na 60 minut. Upewnij się, że fragmenty tkanki są w ciągłym ruchu podczas mieszania.
Wlej 5 mililitrów 66% pożywki do separacji gęstości na bazie krzemionki do każdej z trzech oddzielnych 15-mililitrowych probówek polipropylenowych. Następnie użyj 25-mililitrowej pipety serologicznej, aby zebrać tylko supernatant z Kolagenazy Trawienie 1. Przefiltrować supernatant przez sitko z tkaniny filtracyjnej o długości 40 mikrolitrów, umieszczone w czystej stożkowej rurce polipropylenowej o pojemności 50 mililitrów. Napełnij probówkę całkowicie schłodzonym buforem okrężnicy, aby ugasić bufor do trawienia kolagenazy. Następnie odkręć komórki, odessaj supernatant i trzymaj osad na lodzie.
Kontynuuj wykonywanie trawienia kolagenazy 2 zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Po zakończeniu trawienia kolagenazy 2 energicznie przepłucz fragmenty tkanki tam iz powrotem między tubką a 10-mililitrową strzykawką przez igłę 18G z końcem. Powtarzaj to płukanie przez co najmniej siedem do ośmiu pasaży, kontynuując, aż nie będą widoczne żadne duże fragmenty tkanek ani zanieczyszczenia.
Następnie przepuść zawiesinę dezagregacji tkanek przez sitko do komórek z tkaniny filtracyjnej o porach 40 mikrometrów, umieszczone w czystej 50-mililitrowej probówce polipropylenowej. Napełnij probówkę do brzegu schłodzonym buforem okrężnicy, aby wygasić trawienie i odwirować przy 800 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut.
Odrzucić supernatant przez aspirację próżniową i wyciągnąć zawieszony osad z Kolagenazy Trawienie 1 do odpowiedniej probówki. Następnie ponownie zawieś każdą granulkę w 24 mililitrach 44% pożywki do separacji gęstości na bazie krzemionki na okrężnicę. Użyj 10-mililitrowej pipety serologicznej, aby powoli nałożyć 8 mililitrów tego podłoża na każdą z trzech probówek zawierających 66% pożywki do separacji gęstości na bazie krzemionki.
Ostrożnie wyważ probówki w wiadrach wirówkowych za pomocą wagi lub wagi. Wirować przy 859 x g i w temperaturze 20 stopni Celsjusza przez 20 minut bez przerwy. Pozwól, aby wirniki całkowicie się zatrzymały przed wyjęciem rurek, uważając, aby nie zakłócić ogniw na granicy gradientu.
Wizualizuj interfejs gradientu w pobliżu znaku 5 mililitrów, w którym zwykle występuje biały pasek o grubości 1-2 milimetrów. Odessać próżniowo i wyrzucić górne 7 mililitrów gradientu, aby umożliwić łatwiejszy dostęp pipety do interfejsu. Używając ciągłego ręcznego ssania i stałego ruchu obrotowego nadgarstka, zbierz warstwę interfejsu komórek. Zbieraj, aż granica między dwoma gradientami będzie czysta i ogniotrwała, a następnie przenieś interfejs do nowej 50-mililitrowej stożkowej rurki polipropylenowej.