$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Technika perforowanego patch-clamp umożliwia pomiary w czasie rzeczywistym prądów jonowych związanych z aktywnością kanałów jonowych na komórkach takich jak detruzja mięśni gładkich lub DSM pęcherza moczowego.
Na początek załaduj zawiesinę komórek DSM do szklanej komory i inkubuj, aby umożliwić przyleganie komórek. Następnie dodaj roztwór zewnątrzkomórkowy zawierający jony tetraetyloamonu i cezu do przylegających komórek. Kationy te blokują kanały potasowe na błonie komórkowej i hamują zakłócające prądy potasowe.
Następnie weź wypolerowaną pipetę z zaciskiem krosowym - cienką, pustą szklaną rurkę zawierającą elektrodę nagrywającą podłączoną do wzmacniacza. Napełnij pipetę z przodu roztworem wewnątrzkomórkowym i wypełnij ją tym samym roztworem, ale zawierającym amfoterycynę-B, antybiotyk perforujący błonę.
Teraz zanurz końcówkę pipety w roztworze zewnątrzkomórkowym zawierającym komórki DSM. Po ustawieniu potencjału i prądu na odpowiednich poziomach należy przesunąć końcówkę pipety w kierunku błony komórkowej i jednocześnie monitorować rezystancję elektrody.
Szybki wzrost wartości oporu wskazuje, że końcówka pipety dotarła do błony komórkowej. Teraz delikatnie przysłać elektrodę, aby utworzyć szczelne uszczelnienie zwane giga-seal między końcówką pipety a błoną plazmatyczną.
Po utworzeniu uszczelnienia amfoterycyna powoli dyfunduje do końcówki i perforuje błonę, tworząc pory jonowe. Po osiągnięciu optymalnej perforacji jony przemieszczają się między ogniwami a elektrodą, generując prądy proporcjonalne do funkcji kanału jonowego.
Pobrać pipetę od 0,25 do 1 mililitra zawiesiny komórek do komory ze szklanym dnem umieszczonej na stoliku mikroskopu odwróconego i inkubować przez co najmniej 45 minut, aby komórki mogły przylegać. Następnie usunąć DS z kąpieli i zastąpić go roztworem E przez przefuzję.
Wyciągnij kilka elektrod łatkowych, wypoleruj końcówki elektrod i w razie potrzeby pokryj końcówki woskiem dentystycznym. Napełnij końcówkę elektrody plastrowej roztworem pipety bez amfoterycyny-B, zanurzając elektrodę na krótko w roztworze. Powodzenie elektrofizjologii patch-clamp zależy od jakości ogniw DSM i solubilizacji amfoterycyny-B.
Napełnij elektrodę tym samym roztworem pipety zawierającym amfoterycynę-B i zamontuj elektrodę na uchwycie podłączonym do stopnia głównego wzmacniacza z zaciskiem krosowym. Użyj mikromanipulatora, aby umieścić elektrodę tuż pod powierzchnią roztworu zewnątrzkomórkowego, tak aby końcówka elektrody była po prostu zanurzona.
Następnie określ rezystancję elektrody za pomocą funkcji okna testu membrany w komercyjnym oprogramowaniu do akwizycji i przesuń elektrodę w kierunku interesującego ogniwa. Dotykając powierzchni ogniwa elektrodą, utwórz giga-uszczelnienie, przykładając delikatne szybkie podciśnienie do elektrody za pomocą rurki. Powoduje to podciśnienie na końcówce elektrody, co skutkuje udanym gigauszczelnieniem, co zostało potwierdzone testem membranowym.
Odczekać od 30 do 60 minut, aż amfoterycyna-B rozdyfunduje się w pipecie i zostanie wprowadzona do błony plazmatycznej, tworząc pory głównie selektywne w stosunku do kationów jednowartościowych. Kontynuuj monitorowanie giga-seal za pomocą funkcji Membrane Test.
Gdy perforacja łaty jest optymalna, zlikwiduj stany przejściowe pojemności, regulując pokrętła pojemności ogniwa i rezystancji szeregowej na wzmacniaczu. Po zaobserwowaniu stabilnych prądów kationowych krokowych napięć, zapisz prądy za pomocą protokołu routingu napięciowego, jak opisano w manuskrypcie.