Dostarczanie plazmidów DNA do nabłonka dróg moczowych pęcherza myszy: procedura oparta na elektroporacji mająca na celu skuteczne dostarczanie plazmidów DNA do komórek urotelialnych pęcherza myszy w celu wygenerowania modeli modyfikowanych genetycznie

0 wyświetleń3:56 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Na początek przygotuj znieczuloną samicę myszy w pozycji leżącej. Upewnij się, że jego pęcherz jest całkowicie pusty. Przez otwór cewki moczowej wprowadzić nasmarowany cewnik. Smarowanie pomaga w płynnym przejściu cewki moczowej w celu wejścia do pęcherza.

Po cewnikowaniu wykonaj nacięcie brzucha i wypreparuj mięśnie wewnętrzne, aby odsłonić pęcherz. Następnie odpipetować zawiesinę plazmidów DNA zmieszanych z odpowiednim barwnikiem do zewnętrznego końca cewnika. Te plazmidy DNA kodują fluorescencyjny gen reporterowy.

Przymocuj strzykawkę do cewnika i wepchnij ją, aby dostarczyć roztwór plazmidu do pęcherza. Wstrzyknięte cząsteczki barwnika barwią pęcherz moczowy, potwierdzając pomyślne podanie roztworu plazmidu. Wyjmij zespół cewnika i dokręć zewnętrzny otwór cewki moczowej, aby zapobiec wypływaniu roztworu plazmidu.

Teraz uszczypnij pęcherz za pomocą dwóch elektrod podłączonych do generatora elektroporacji. Przyłóż impulsy elektryczne o odpowiednim napięciu przez żądany okres do pęcherza. Wystawienie nabłonka dróg moczowych, najbardziej wewnętrznej wyściółki pęcherza moczowego, na działanie zastosowanych pól elektrycznych, powoduje powstawanie tymczasowych porów w błonie komórkowej urotelialnej.

Zwiększona przepuszczalność błony pozwala na sprawne dostarczanie wstrzykniętych plazmidów DNA do komórek. Po elektroporacji zszyj nacięcie chirurgiczne. Pozwól myszy na odzyskanie sprawności. Komórki urotelialne transfekowane plazmidami DNA wyrażają fluorescencyjne białka reporterowe.

Dla każdego pęcherza do transfekcji przygotuj co najmniej 20 mikrolitrów plazmidu DNA w dawce 1 mikrogram na mikrolitr. Następnie dodaj 1 mikrolitr błękitu trypanowego do 20 mikrolitrów roztworu plazmidu w 1,5-mililitrowej probówce do mikrowirówki i pipetę, aby dobrze wymieszać. Aby dostarczyć plazmid, nałóż 70% etanolu na brzuch. Wykonaj pionowe nacięcie o długości 1 centymetra, aby otworzyć skórę brzucha nad pęcherzem.

Następnie przetnij warstwę mięśni, aby odsłonić pęcherz. Pobrać pipetą co najmniej 20 mikrolitrów plazmidu z roztworem błękitu trypanowego do zewnętrznego końca cewnika i podłączyć go do strzykawki. Następnie wstrzyknąć roztwór plazmidu do pęcherza moczowego. Jeśli pęcherz zmieni kolor na niebieski, wstrzyknięcie się powiedzie. Pozostaw trochę płynu w cewniku, aby uniknąć tworzenia się pęcherzyków powietrza w pęcherzu.

Następnie chwyć zewnętrzny otwór cewki moczowej i wyjmij cewnik i strzykawkę. Użyj sznurka, aby zacisnąć zewnętrzny otwór cewki moczowej. Zrób dwie pętle ze sznurkiem, a następnie zawiąż dwoma węzłami. Jest to kluczowy krok, który wymaga współpracy dwóch osób. Upewnij się, że węzły są napięte, aby plazmidy nie wyciekły.

Teraz włącz generator elektroporacji. Ściśnij pęcherz dwiema elektrodami i naciśnij pedał nożny, aby wykonać elektroporację. Aby utrzymać pęcherz podparty, można uszczypnąć tylną część nacięcia brzucha pęsetą. Unikaj kontaktu pęsety z elektrodami, ponieważ może to spowodować powstanie iskry.

Po wykonaniu tej czynności zszyj jamę brzuszną i otwór skóry sterylnym szwem chirurgicznym. Usuń sznurek i przyłóż klipsy. Nałóż jod na ranę, a następnie usuń zwierzę z układu izofluranu. Buprenorfinę przeciwbólową podawać podskórnie w celu złagodzenia bólu pooperacyjnego. Trzymaj zwierzę na poduszce grzewczej i po pełnym wyzdrowieniu włóż je z powrotem do klatki domowej.

05:40

In vivo (in vivo) Transfer genów do komórek Schwanna w nerwie kulszowym gryzoni za pomocą elektroporacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:31

CRISPR/Cas9 Precyzyjna edycja genów za pośrednictwem rybonukleoprotein za pomocą elektroporacji rurkowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:32

Knock-in genu przez CRISPR/Cas9 i sortowanie komórek w liniach makrofagów i limfocytów T

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:24

Transuretralna indukcja infekcji dróg moczowych u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:48

Iniekcja w ścianę pęcherza myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:02

Wyczerpanie moczu i płukanie pęcherza moczowego w modelu mysim: procedura oparta na cewniku do opróżniania i mycia mysiego pęcherza moczowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:36

Hydrodynamiczne wstrzyknięcie do miednicy nerkowej: technika bezpośredniego dostarczania DNA do komórek nerkowych modelu mysiego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:19

Dostarczanie genów oparte na elektroporacji in utero: technika wstrzykiwania plazmidowego DNA do embrionalnych komórek móżdżku mysich zarodków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:59

Dostarczanie genów in vitro za pośrednictwem elektroporacji: technika impulsów elektrycznych do wprowadzania fluorescencyjnych plazmidów kodujących białko reporterowe do hodowanych komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:48

Ortotopowy model raka pęcherza moczowego do badań nad dostarczaniem genów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026