Wstrzyknięcie barwnika błękitu metylenowego w zarodkowych drogach moczowych myszy: metoda oceny wrodzonej niedrożności dróg moczowych

0 wyświetleń3:47 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby ocenić niedrożność dróg moczowych, należy rozpocząć od unieruchomienia okołoporodowego zarodka myszy w pozycji leżącej. Teraz przeprowadź sekcję jamy brzusznej zarodka, aby zlokalizować w pełni rozwinięte drogi moczowe, które składają się z pary nerek, moczowodów i wspólnego pęcherza moczowego z cewką moczową.

Następnie należy wziąć pustą strzykawkę podłączoną do rurki wyposażonej w mikroigłę. Napełnij zespół roztworem błękitu metylenowego - ciemnoniebieskim barwnikiem śledzącym. Wprowadzić mikroigłę do światła miedniczki nerkowej - lejkowatego, poszerzonego proksymalnego końca moczowodu w nerce - i wstrzyknąć roztwór barwnika.

Pod wpływem ciśnienia hydrostatycznego barwnik przepływa z miedniczki nerkowej nerek przez moczowód i ostatecznie gromadzi się w świetle pęcherza moczowego. Powtórz procedurę wstrzykiwania barwnika z przeciwległą nerką, aby sprawdzić przepływ barwnika z odpowiedniej strony dróg moczowych.

Na koniec użyj mikroskopu stereoskopowego z kamerą, aby zobrazować drogi moczowe. Podczas obrazowania niedrożny układ moczowy wykazuje głęboko zabarwiony pęcherz moczowy, podczas gdy nieprawidłowy układ moczowy z niedrożnością ogranicza swobodny przepływ barwnika. W zależności od stopnia zablokowania obserwuje się całkowity lub częściowy brak barwnika w świetle pęcherza.

Za pomocą kleszczy ostrożnie rozerwij skórę, aby otworzyć jamę brzuszną zarodka. Następnie ostrożnie usuń nadmiar narządów i tkanek, takich jak wątroba, żołądek i jelita, za pomocą kleszczy, przecinając je lub wyciągając, aby odsłonić nerki, moczowody i pęcherz moczowy, które znajdują się grzbietowo. Wchłonąć nadmiar krwi z wypreparowanego zarodka za pomocą sterylnych gazików, a następnie kontynuować wstrzyknięcie farbiarskie.

Usunąć pęcherzyki z igły i rurki, usuwając roztwór błękitu metylenowego z końcówki igły za pomocą ciśnienia hydrostatycznego. Podnieś strzykawkę zawierającą roztwór barwnika powyżej poziomu końcówki igły, aby rozpocząć przepływ, a następnie opuść strzykawkę, aby zatrzymać przepływ. Następnie wbij igłę do miedniczki nerkowej w pobliżu bliższego moczowodu, uważając, aby nie naruszyć jej po umieszczeniu. Wykonaj wstrzyknięcie barwnika do nerki, aby określić jej niedrożność dróg moczowych.

Odpowiednie wprowadzenie igły do miedniczki nerkowej decyduje o powodzeniu tego badania. Igła powinna być wprowadzona do miedniczki nerkowej w kierunku moczowodu, nie przechodząc ani przez nerkę, ani w kierunku naczynia krwionośnego.

Podnieś strzykawkę na około 20 centymetrów, aby zapewnić ciśnienie hydrostatyczne i pozwól przepłynąć 15 do 16 mikrolitrów roztworu barwnika. Następnie monitoruj niebieski kolor barwnika, zaczynając najpierw w miedniczce nerkowej, następnie na długości moczowodu, a na końcu w świetle pęcherza moczowego. Umieścić strzykawkę w dół, aby zatrzymać przepływ barwnika i wyjąć igłę z nerki. Zapisz wodonercze nerki, wodonerek i końcowe położenie roztworu barwnika w zeszycie laboratoryjnym.

Na koniec wykonaj wstrzyknięcie do przeciwległej nerki i pozwól barwnikowi płynąć przez łącznie 20 sekund. Wykonaj zdjęcia nerki, moczowodu i pęcherza moczowego prześledzone roztworem barwnika za pomocą aparatu i programu do obrazowania podłączonego do mikroskopu stereoskopowego.

08:28

Iniekcja do komór mózgowych danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:58

Mikroiniekcja nefrotoksyny u danio pręgowanego w celu modelowania ostrego uszkodzenia nerek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Zastosowanie 1% barwnika błękitu metylenowego jako pojedynczej techniki w biopsji węzła wartowniczego raka piersi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:24

Transuretralna indukcja infekcji dróg moczowych u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:24

Metoda wysokoprzepustowej hybrydyzacji in situ do charakteryzacji wzorców ekspresji mRNA w dolnym odcinku dróg moczowo-płciowych płodu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:14

Wizualizacja infekcji dróg moczowych w modelu myszy z wykorzystaniem bioluminescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:23

Przygotowanie tkanek pęcherza myszy do wizualizacji infekcji bakteryjnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:06

Wizualizacja społeczności bakteryjnych wewnątrzkomórkowych w zakażonym pęcherzu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:52

Prenatalne pobieranie zarodków myszy: procedura pobierania zarodków od ciężarnej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:05

Ocena wad niedrożności połączeń dróg moczowych za pomocą iniekcji barwnika błękitu metylenowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026