Kolonoskopowa biopsja szczypty pod kontrolą w modelu mysim: technika wizualizacji i ekstrakcji próbek tkanek z okrężnicy myszy

W warunkach patologicznych kolonoskopia umożliwia wizualizację ekstrakcji jelita grubego i tkanek za pomocą biopsji szczyptowej w celu szczegółowej analizy ran zapalnych.

Aby wykonać biopsję szczyptową pod kontrolą kolonoskopową u myszy, należy rozpocząć od biopsji. Zespół zawiera zespół łącznika, osłonę endoskopu z wstępnie włożonym kolonoskopem o optymalnej średnicy. Kolonoskop jest podłączony do źródła światła, źródła wideo, portu gazowego i portu instrumentu do kleszczy biopsyjnych.

Następnie przygotuj znieczuloną mysz w pozycji leżącej na platformie kolonoskopowej. Pociągnij ogon do góry i użyj igły do zgłębnika, aby napełnić odbyt odpowiednim buforem, aby wypłukać wszelkie odchody. Następnie włóż kolonoskop do odbytu i wsuń go do odbytnicy. Kontynuuj przesuwanie kolonoskopu dalej w kierunku okrężnicy, jednocześnie pompując gaz, aby utrzymać okrężnicę napompowaną.

Następnie wyprowadź kleszcze z portu instrumentu i otwórz szczęki. Obróć kleszcze pod kątem prostym, aby wywołać ranę o optymalnej głębokości. Rany, które są zbyt płytkie lub zbyt głębokie, powodują odpowiednio powierzchowną ranę lub perforację jelita grubego. Następnie, za pomocą kleszczy biopsyjnych, uszczypnij tkankę okrężnicy. Pobrana tkanka i indukowana rana mogą być dalej analizowane w celu zrozumienia patofizjologii.

Przed rozpoczęciem zabiegu należy włożyć endoskop ze sztywnym otworem o średnicy 1,9 milimetra do osłony endoskopu i przymocować zmontowany endoskop do źródła światła i urządzenia do obrazowania wideo zgodnie z instrukcjami producenta. Użyj dostarczonej rurki, aby podłączyć pompę powietrza do zaworu gazowego po lewej stronie osłony, obok kanału roboczego.

Upewnij się, że kanał roboczy jest w pozycji otwartej i włóż 3 kleszcze do biopsji Fr przez kanał roboczy. Przesuń kleszcze do końca pochwy, nie wystając z pochwy.

Następnie umieść znieczuloną mysz na endoskopowej platformie inscenizacyjnej po jej brzusznej stronie i potwierdź odpowiedni poziom sedacji poprzez brak reakcji na odruch pedałowania. Po nałożeniu maści do oczu napełnij 3-mililitrową strzykawkę dołączoną igłębką do szczurów z PBS o temperaturze pokojowej i włóż igłę na około 1 centymetr do odbytu myszy. Delikatnie zaparzaj PBS, aż kał zostanie usunięty. Kilka granulek kału powinno opuścić mysz wraz z PBS, który został podany w infuzji.

Włóż zmontowany endoskop na 0,5 centymetra do odbytu i wsuń kleszcze do biopsji do oczyszczonego światła odbytnicy, aż pełne "szczęki" kleszczy znajdą się poza końcem osłonki. Obróć kleszcze o 90 stopni, tak aby szczęki otworzyły się w orientacji wschód-zachód, a następnie otwórz końcówki i przesuń kleszcze o około 1 centymetr, zamykając i chowając kleszcze jednym płynnym, szybkim ruchem, aby pobrać biopsję. Aby uniknąć całkowitego wdmuchiwania jelita grubego podczas wykonywania biopsji, pozostaw prawą stronę zaworu gazowego otwartą.