Wytwarzanie plastrów komór świń: technika oparta na wibratomie do przygotowywania ultracienkich plastrów tkanki serca świni

0 wyświetleń4:58 min • July 8th, 2025

Plastry tkanki serca ssaków - ultracienkie plasterki żywotnej tkanki serca komory ssaków - zachowują architekturę i fizjologię tkanki serca, co czyni je systemami modelowymi do translacyjnych badań sercowo-naczyniowych.

Aby wytworzyć plastry tkanki serca świni, umieść świeżo zebrane serce świni na tacy zawierającej schłodzony roztwór kardiofilegiczny, który tymczasowo zatrzymuje aktywność serca, chroniąc serce. Wypreparuj serce, aby wyizolować lewą komorę, a następnie pokrój je na bloki tkankowe o jednolitej wielkości. Za pomocą kleju tkankowego przymocuj blok tkanki płasko do wstępnie przygotowanego bloku agarowego przymocowanego do podstawy uchwytu próbki wibratomu, nasierdziem serca - zewnętrzną warstwą serca - skierowanym w dół.

Przenieś uchwyt próbki do schłodzonej, natlenionej, wypełnionej buforem, wibratomicznej tacki do krojenia, aby utrzymać warunki fizjologiczne tkanki i schłodzić ją podczas krojenia. Dostosuj wysokość ostrza wibratomu i parametry cięcia w oparciu o żądaną grubość przekroju tkanki. Podczas biegu wibrujące ostrze przesuwa się i wnika w blok tkanki.

Agar zapewnia stabilność bloku tkanki podczas krojenia i utrzymuje ostrze na jednej ścieżce, generując jednolite, nienaruszone wycinki tkanki serca z wyrównanymi włóknami mięśnia sercowego. Zbierz i przenieś wycinki tkanki do natlenionej kąpieli buforowej, aby zmniejszyć uszkodzenie tkanek. Wycinki tkanki serca są gotowe do dalszej analizy.

Aby uzyskać plastry tkanki serca świni, najpierw dodaj lód do płaszcza chłodzącego kąpiel tkankową wibratomu i dodaj roztwór Tyrode'a do kąpieli. Użyj plastikowego słoika o pojemności 1 litra, aby zebrać stopiony lód spływający z płaszcza chłodzącego kąpiel tkankową i przenieś serca świń na tacę zawierającą 1 litr świeżego, zimnego roztworu kardioplegicznego w komorze bezpieczeństwa biologicznego.

Użyj wysuwanych sterylnych skalpeli do wypreparowania serca, aby wyizolować lewą komorę, i użyj prostokątnych żyletek, aby przeciąć lewą komorę na bloki o długości od 1 do 2 centymetrów sześciennych. Odłóż na bok jeden blok tkanki do krojenia, a pozostałe kawałki tkanki umieść w 50-mililitrowej tubce zimnego roztworu Tyrode'a na lodzie.

Delikatnie masuj zarezerwowany blok tkanki i dodaj 1 do 2 kropli kleju tkankowego do metalowego uchwytu na próbkę wibratomu. Przyklej do kleju kawałek 4% bloku agaru o powierzchni około 1 centymetra kwadratowego i dodaj 1 do 2 kropli kleju tkankowego do agaru.

Przymocuj blok serca do agaru, nasierdziem serca do dołu, tak aby tkanka przylegała jak najbardziej płasko do uchwytu, a następnie umieść uchwyt na tkankę z blokiem serca w kąpieli do krojenia wibratomu.

Bardzo ważne jest, aby przykleić blok serca do agaru stroną z nasierdzia serca skierowaną w dół na kleju tkankowym i upewnić się, że tkanka jest tak płaska, jak to tylko możliwe.

Następnie podłącz rurkę tlenową do kąpieli do krojenia i metalowej tacki wypełnionej roztworem Tyrode'a i umieść 40-mikrometrowe sitka do komórek na metalowej tacy, aby zebrać skrawki tkanki serca podczas ich krojenia. Użyj oprogramowania operacyjnego wibratomu, aby wyregulować wysokość ostrza i próbki, tak aby ostrze znajdowało się blisko górnej części tkanki, ale poniżej mięśni brodawkowatych, a płyn pokrywał tkankę i ostrze.

Wybierz opcję Advance, aby dostosować miejsce, w którym należy rozpocząć krojenie tkanki. Naciśnij Slice, aby zwiększyć prędkość, i użyj pokrętła, aby przesunąć ostrze w kierunku krawędzi tkanki. Naciśnij ponownie Slice, aby zatrzymać, i Advance, aby dezaktywować proces. Następnie dostosuj parametry cięcia zgodnie ze wskazaniami i naciśnij Slice, aby rozpocząć krojenie tkanki. Gdy ostrze dotrze do końca tkanki, ale zanim uderzy w koniec uchwytu próbki, naciśnij ponownie przycisk Slice, aby zatrzymać, a następnie naciśnij Return, aby wrócić do pozycji początkowej.

Gdy plastry osiągną pełną długość i wydają się być dobrej jakości, użyj plastikowej pipety Pasteura wypełnionej zimnym roztworem Tyrode, aby delikatnie pobrać tkankę z kąpieli, używając kleszczy i nożyczek sprężynowych, aby w razie potrzeby przemieścić plasterek z serca. Umieść każdą zebraną porcję w sitku z pojedynczymi komórkami w natlenionej kąpieli Tyrode'a i użyj roztworu w pipecie, aby docisnąć tkankę do powierzchni sitka do komórek.

07:51

Mysie plastry serca o krótkiej osi do badań elektrofizjologicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:19

Izolacja ludzkich kardiomiocytów komorowych z plastrów mięśnia sercowego wycinanych wibratomem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:53

Jednoczesna izolacja i hodowla miocytów przedsionkowych, miocytów komorowych i niemiocytów z serca dorosłej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:42

Organotypowa hodowla skrawków embrionów myszy wykazujących ekspresję GFP do obrazowania w czasie rzeczywistym wzrostu nerwów obwodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:17

Organotypowa hodowla pełnowartościowej siatkówki dorosłej świni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:14

Przekroje wibratomowe całej mysiej nerki: technika generowania cienkich odcinków mysiej nerki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:48

Przygotowanie mysiego narządu lemieszowo-nosowego do przekroju wibratomu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:00

Ustalenie i analiza eksplantatów plastrów guza jako warunek wstępny do badań diagnostycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:35

Przedkliniczna ocena elektrofizjologii serca za pomocą optycznego mapowania dwunapięciowego i wapniowego ludzkich organotypowych wycinków serca

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:54

Krojenie i hodowla serc wieprzowych w warunkach fizjologicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026