Nokaut wielu genów za pośrednictwem CRISPR: technika jednoczesnego nokautowania wielu genów za pomocą niehomologicznego szlaku łączenia końców w komórkach jelitowych myszy

0 wyświetleń4:13 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby jednocześnie wyeliminować wiele genów za pomocą systemu CRISPR-concatemer-Cas9, zacznij od rurki zawierającej zawiesinę komórek jelitowych myszy. Uzupełnij probówkę wektorami CRISPR-concatemer zawierającymi kasetę ekspresyjną dla wielu przewodników RNA lub gRNA, zintegrowanych obok siebie.

Każda kaseta gRNA jest specjalnie projektowana, aby indywidualnie wyeliminować zamierzony gen. Dodaj wektory ekspresji kodujące endonukleazę Cas9 do tej samej probówki. Elektroportuj mieszaninę komórka-plazmid - technika, która wykorzystuje prąd elektryczny w celu ułatwienia wejścia plazmidów do komórki. Wewnątrz komórki koekspresja konkatelera CRISPR i wektora Cas9 tworzy odpowiednio sekwencje gRNA i nukleazy Cas9.

Każda sekwencja gRNA wiąże się z odpowiednim enzymem Cas9, tworząc wiele kompleksów Cas9-gRNA, które przyłączają się do docelowych miejsc w genomie gospodarza. To wiązanie aktywuje enzym Cas9, który wytwarza nacięcie w obu niciach DNA przed miejscem sąsiadującego z motywem protospacerowym lub PAM. Powoduje to pęknięcie dwuniciowe lub DSB w docelowym DNA.

W przypadku braku jakiejkolwiek sekwencji homologicznej do genu docelowego, uruchamiany jest endogenny mechanizm naprawczy komórki, zwany niehomologicznym łączeniem końców, umożliwiając białkom naprawczym i cząsteczkom kinazy związanie się w miejscu pęknięcia. Później enzym ligazy naprawia DSB, co powoduje modyfikacje docelowej sekwencji genu. Modyfikacje te zaburzają funkcję genów, powodując nokaut wielu genów.

Rozpocznij tę procedurę od dodania 9 mililitrów zredukowanej pożywki surowicy do 15-mililitrowej probówki zawierającej zawiesinę komórkową i odwiruj w 400G przez 3 minuty w temperaturze pokojowej. Usunąć cały supernatant i ponownie zawiesić osad w roztworze do elektroporacji. Dodaj łączną ilość 10 mikrogramów DNA do dwóch nowych probówek. Następnie dodaj roztwór do elektroporacji do końcowej objętości 100 mikrolitrów i trzymaj mieszaninę komórka-DNA na lodzie.

Przenieś mieszaninę komórka-DNA do kuwety do elektroporacji. Umieść kuwetę w komorze elektroporatora. Zmierz impedancję, naciskając odpowiedni przycisk na elektroporatorze i upewnij się, że wynosi od 0,030 do 0,055 oma. Wykonaj elektroporację zgodnie z ustawieniami wskazanymi w protokole tekstowym. Dodaj 400 mikrolitrów buforu do elektroporacji i inhibitora ROCK do kuwety, a następnie przenieś całą jej zawartość do 1,5-mililitrowej probówki.

Inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 minut, aby komórki mogły się zregenerować. Po 30 minutach wiruj z prędkością 400G przez 3 minuty w temperaturze pokojowej. Usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad w 20 mikrolitrach na studzienkę matrycy piwnicznej. Wysiewaj około 1 x 104 do 1 x 105 komórek na studzienkę na 48-dołkową płytkę i dodaj EGF plus inhibitor Noggin GSK-3, inhibitor ROCK i 1,25% pożywki dimetylosulfotlenku. Inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

08:25

Wykorzystanie techniki fluorescencyjnej elektroforezy żelowej kapilarnej PCR do genotypowania mutantów nokautujących za pośrednictwem CRISPR/Cas9 w formacie wysokoprzepustowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Analiza utraty funkcji za pośrednictwem CRISPR w komórkach ziarnistych móżdżku przy użyciu transferu genów opartego na elektroporacji in utero

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:05

Badanie zależności genetycznych za pomocą testów konkurencji opartych na CRISPR-Cas9

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:40

Generowanie delecji genomowych w liniach komórkowych ssaków za pomocą CRISPR/Cas9

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:31

Generowanie delecji monoallelicznych za pośrednictwem CRISPR/Cas9 w celu zbadania funkcji wzmacniacza w embrionalnych komórkach macierzystych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:19

Generowanie genetycznie zmodyfikowanych myszy poprzez mikroiniekcję oocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:35

Zależne od selekcji i niezależne generowanie nokautów genów za pośrednictwem CRISPR/Cas9 w komórkach ssaków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:53

Protokół wielokrotnego nokautu genów w organoidach jelita cienkiego myszy przy użyciu konkategomera CRISPR

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:22

Ukierunkowana integracja in vivo za pośrednictwem CRISPR/Cas9 przy użyciu strategii opartej na łączeniu końcowym za pośrednictwem homologii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:27

Wydajna produkcja i identyfikacja nokautów genów generowanych przez CRISPR/Cas9 w systemie modelowym Danio rerio

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026