$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zacznij od monowarstwy komórek nabłonkowych w odpowiednim pożywce hodowlanej. Komórki te wyrażają integryny - receptory powierzchniowe obejmujące błonę. Pożywka hodowlana zawiera fibronektynę wydzielaną przez komórki nabłonkowe - glikoproteinę.
Dodać zawiesinę Staphylococcus aureus - bakterii chorobotwórczej Gram-dodatniej - do płytki hodowlanej. Bakterie te zawierają białka wiążące fibronektynę lub FnBP zakotwiczone w ich ścianie komórkowej.
Inkubuj płytkę, aby zainicjować infekcję bakteryjną, w której fibronektyna wiąże się z FnBP bakterii i integrynami na nabłonkowych komórkach gospodarza. Ta trójstronna interakcja FnBP-fibronektyna-integryna pośredniczy w internalizacji bakterii w gospodarzu.
Potraktuj komórki lizostafiną - enzymem endopeptydazy - i inkubuj. Lizostafina selektywnie wnika do ścian komórkowych bakterii zewnątrzkomórkowych. Rozszczepia mostki pentaglicyny w peptydoglikanach, powodując ich lizę, podczas gdy bakterie wewnątrzkomórkowe pozostają chronione przed lizostafiną.
Uzupełnij kulturę enzymem proteolitycznym, aby dezaktywować pozostałą lizostafinę, zapobiegając zabijaniu bakterii wewnątrzkomórkowych na etapach.
Dodaj bufor do lizy do hodowli, który rozrywa komórki nabłonka gospodarza i uwalnia bakterie wewnątrzkomórkowe w lizacie komórkowym. Następnie umieść lizat komórkowy zawierający bakterie na odpowiedniej płytce hodowlanej i inkubuj.
Bakterie rosną i namnażają się, tworząc kolonie bakteryjne, które można analizować w celu oszacowania zakresu internalizacji bakterii w komórkach gospodarza.
Przed inokulacją komórek obserwuj każdą studzienkę 24-dołkowej płytki za pomocą mikroskopii w małym powiększeniu, aby upewnić się, że komórki są zdrowe i rosną zgodnie z oczekiwaniami. Następnie usuń i wyrzuć zużytą pożywkę do hodowli komórkowych z 24-dołkowej płytki i dodaj 500 mikrolitrów zawiesiny bakteryjnej do każdej studzienki zawierającej 100% zlewających się komórek. Inkubuj komórki przez 2 godziny w temperaturze 36 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla.
Aby określić ilościowo bakterie wewnątrzkomórkowe za pomocą ulepszonego testu ochrony enzymatycznej, przygotuj 4-krotny bufor do lizy, 2% Triton X-100, trypsynę-EDTA i lizostafinę oraz roztwory robocze, jak wspomniano w manuskrypcie tekstowym.
Następnie przygotuj 6,25 mililitra kompletnej pożywki infekcyjnej uzupełnionej lizostafiną, dodając 6 mililitrów kompletnej pożywki infekcyjnej do 250 mikrolitrów roztworu roboczego lizostafiny. Następnie dodaj 250 mikrolitrów kompletnej pożywki infekcyjnej uzupełnionej lizostafiną do każdej studzienki i delikatnie porusz płytkę, obracając ją ręcznie.
Aby lizostafina mogła zabić bakterie zewnątrzkomórkowe, inkubuj komórki przez 1 godzinę w temperaturze 36 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla. Następnie dezaktywuj lizostafinę, dodając 10 mikrolitrów proteinazy K w dawce 20 mikrogramów na mililitr do każdej studzienki i inkubując komórki przez 2 minuty w temperaturze pokojowej.
Następnie dodaj 250 mikrolitrów buforu do lizy 4X w celu lizy komórek przez szok osmotyczny i inkubuj komórki przez 10 minut w temperaturze 36 stopni Celsjusza. Po inkubacji kilkakrotnie odpipetować lizat komórek w górę i w dół, aby upewnić się, że komórki są w pełni zlizowane i homogenizowane.
Następnie użyj automatycznej spiralnej płytki, aby określić obciążenie Staphylococcus aureus w każdym dołku i inkubować płytki agarowe przez 18 do 24 godzin w temperaturze 36 stopni Celsjusza. Następnego dnia policz liczbę kolonii za pomocą licznika kolonii, aby obliczyć wewnątrzkomórkowe obciążenie Staphylococcus aureus każdej studzienki.