JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 4:08 min • July 8th, 2025
Ilościowy PCR z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym jest przydatny do identyfikacji infekcji wirusowych.
Rozpocznij od próbki zawierającej docelowe wirusowe RNA. Dodaj startery specyficzne dla celu - wspomagające zarówno syntezę, jak i amplifikację DNA - wraz z enzymem odwrotnej transkryptazy i dNTP.
Dodaj termostabilną polimerazę DNA - enzym do amplifikacji DNA w cyklach PCR - i SYBR green - barwnik, który interkaluje się w dwuniciowy DNA, dsDNA. Umieść reakcję w termocyklerze. Ustaw odpowiednią temperaturę, aby startery związały się z docelowym RNA.
Odwrotna transkryptaza dodaje dNTP do startera, jednocześnie rozszczepiając matrycę RNA, syntetyzując cDNA.
Zwiększ temperaturę, dezaktywując odwrotną transkryptazę. Obniż temperaturę, pozwalając starterom na wyżarzanie się do cDNA w celu późniejszej amplifikacji. Zwiększ temperaturę, aby osiągnąć etap wydłużania, w którym polimeraza DNA rozciąga startery, syntetyzując dsDNA.
Kolejne cykle skutkują wykładniczą amplifikacją dsDNA. SYBR zielony wiąże się z DNA w coraz większej liczbie, powodując proporcjonalny wzrost emisji fluorescencji. Wykreśl sygnał fluorescencyjny wykryty w różnych cyklach.
Dodatnia krzywa amplifikacji wskazuje na obecność wirusowego RNA w próbce.
Stopniowo zwiększaj temperaturę, aby osiągnąć temperaturę topnienia, denaturując dsDNA na pojedyncze nici. Związane cząsteczki barwnika zostają uwolnione - tracąc swoją fluorescencję. Wykreślić malejącą fluorescencję w zależności od temperatury.
Szczyt odpowiadający specyficznej dla wirusa temperaturze topnienia potwierdza infekcję wirusową.
Zaplanuj układ swojej płytki PCR za pomocą arkusza kalkulacyjnego, biorąc pod uwagę zarówno próbki testowe, jak i kontrolne. Przygotuj stację roboczą do PCR, dezynfekując powierzchnie, a jeśli używasz szafki UV, włącz światło UV 10 minut przed rozpoczęciem.
Wyjmij odczynniki i startery z zamrażarki do rozmrożenia, ale przez cały czas trzymaj mieszankę enzymów na lodzie. Wymieszaj odczynniki i krótko odwiruj, aby zebrać płyn. Przygotować wzorcowe mieszaniny PCR dla lizsywirusa i beta-aktyny, zgodnie ze wskazówkami manuskryptu. Pozostaw mieszanki główne na lodzie, aż będą gotowe do użycia. Wymieszać i odwirować przygotowane mieszanki wzorcowe, a następnie dozować 19 mikrolitrów do odpowiednich dołków na płytce lub probówce kompatybilnej z maszyną do PCR.
W oddzielnym pomieszczeniu lub komorze UV ostrożnie dodaj 1 mikrolitr przygotowanego RNA. Jeśli korzystasz z szafki UV, włącz światło UV 10 minut przed rozpoczęciem. Po pobraniu badanych próbek dodać kontrolę dodatnią i kontrolę bez matrycy.
Dodając RNA do mieszanek głównych, upewnij się, że jest on dodany do właściwej studzienki. Skorzystaj z planu płyty, aby pomóc w tym kroku.
Zamknij płytkę, sprawdzając, czy pokrywki są płaskie w poprzek płytki, i obróć ją w dół, aby zebrać cały płyn na dnie studzienek. Upewnij się, że każda studzienka ma taką samą objętość płynu i nie są widoczne żadne pęcherzyki. Następnie przenieś próbki do maszyny do PCR.
Otwórz program, wybierając "SYBR Green" z "Dissociation". Wybierz studzienki do analizy, wybierając "Nieznany" jako typ próbki i "SYBR" jako barwnik fluorescencyjny. Oznacz studzienki na układzie płytki informacjami o próbce, w tym tym, czy test dotyczy studzienki Lyssavirus, czy beta-aktyny.
Kliknij "Ustawienia profilu termicznego " i zmodyfikuj warunki cykli termicznych zgodnie z opisem w manuskrypcie. Kliknij "Start", a następnie wybierz lokalizację, w której chcesz zapisać plik, i zaznacz pole, aby wyłączyć lampę na końcu biegu. Gdy pojawi się opcja rozpoczęcia przed rozgrzaniem lampy, kliknij "Uruchom teraz", ale upewnij się, że lampa ma mniej niż 15 minut na rozgrzanie.
Niniejszy artykuł omawia zastosowanie ilościowej reakcji polimerazy w czasie rzeczywistym z odwrotną transkrypcją (qRT-PCR) w identyfikacji infekcji wirusowych. Metoda ta polega na amplifikacji wirusowego RNA w celu wykrycia obecności specyficznych wirusów w próbkach.
Ilościowa odwrócona transkrypcja i PCR w czasie rzeczywistym (qRT-PCR) umożliwia szybką i czułą detekcję RNA wirusa, wspierając identyfikację patogenów na wczesnym etapie oraz ocenę ryzyka w badaniach i rozwoju biofarmaceutycznym. Wyniki ilościowe oraz analiza krzywej topnienia zapewniają wysoką pewność prognostyczną w zakresie walidacji celu i opracowywania testów. Zdolność ta jest kluczowa dla selekcji projektów w portfolio oraz rozwoju strategii biomarkerów translacyjnych w badaniach nad chorobami zakaźnymi.
qRT-PCR jest wykorzystywany na każdym etapie – od wczesnego odkrywania, przez identyfikację wiodących związków, aż po walidację przedkliniczną, stanowiąc wielokrotnego użytku platformę analityczną dla programów badawczych nad chorobami zakaźnymi.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026