Ilościowy PCR z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym do diagnozowania infekcji wirusowych

0 wyświetleń4:08 min • July 8th, 2025

Ilościowy PCR z odwrotną transkrypcją w czasie rzeczywistym jest przydatny do identyfikacji infekcji wirusowych.

Rozpocznij od próbki zawierającej docelowe wirusowe RNA. Dodaj startery specyficzne dla celu - wspomagające zarówno syntezę, jak i amplifikację DNA - wraz z enzymem odwrotnej transkryptazy i dNTP.

Dodaj termostabilną polimerazę DNA - enzym do amplifikacji DNA w cyklach PCR - i SYBR green - barwnik, który interkaluje się w dwuniciowy DNA, dsDNA. Umieść reakcję w termocyklerze. Ustaw odpowiednią temperaturę, aby startery związały się z docelowym RNA.

Odwrotna transkryptaza dodaje dNTP do startera, jednocześnie rozszczepiając matrycę RNA, syntetyzując cDNA.

Zwiększ temperaturę, dezaktywując odwrotną transkryptazę. Obniż temperaturę, pozwalając starterom na wyżarzanie się do cDNA w celu późniejszej amplifikacji. Zwiększ temperaturę, aby osiągnąć etap wydłużania, w którym polimeraza DNA rozciąga startery, syntetyzując dsDNA.

Kolejne cykle skutkują wykładniczą amplifikacją dsDNA. SYBR zielony wiąże się z DNA w coraz większej liczbie, powodując proporcjonalny wzrost emisji fluorescencji. Wykreśl sygnał fluorescencyjny wykryty w różnych cyklach.

Dodatnia krzywa amplifikacji wskazuje na obecność wirusowego RNA w próbce.

Stopniowo zwiększaj temperaturę, aby osiągnąć temperaturę topnienia, denaturując dsDNA na pojedyncze nici. Związane cząsteczki barwnika zostają uwolnione - tracąc swoją fluorescencję. Wykreślić malejącą fluorescencję w zależności od temperatury.

Szczyt odpowiadający specyficznej dla wirusa temperaturze topnienia potwierdza infekcję wirusową.

Zaplanuj układ swojej płytki PCR za pomocą arkusza kalkulacyjnego, biorąc pod uwagę zarówno próbki testowe, jak i kontrolne. Przygotuj stację roboczą do PCR, dezynfekując powierzchnie, a jeśli używasz szafki UV, włącz światło UV 10 minut przed rozpoczęciem.

Wyjmij odczynniki i startery z zamrażarki do rozmrożenia, ale przez cały czas trzymaj mieszankę enzymów na lodzie. Wymieszaj odczynniki i krótko odwiruj, aby zebrać płyn. Przygotować wzorcowe mieszaniny PCR dla lizsywirusa i beta-aktyny, zgodnie ze wskazówkami manuskryptu. Pozostaw mieszanki główne na lodzie, aż będą gotowe do użycia. Wymieszać i odwirować przygotowane mieszanki wzorcowe, a następnie dozować 19 mikrolitrów do odpowiednich dołków na płytce lub probówce kompatybilnej z maszyną do PCR.

W oddzielnym pomieszczeniu lub komorze UV ostrożnie dodaj 1 mikrolitr przygotowanego RNA. Jeśli korzystasz z szafki UV, włącz światło UV 10 minut przed rozpoczęciem. Po pobraniu badanych próbek dodać kontrolę dodatnią i kontrolę bez matrycy.

Dodając RNA do mieszanek głównych, upewnij się, że jest on dodany do właściwej studzienki. Skorzystaj z planu płyty, aby pomóc w tym kroku.

Zamknij płytkę, sprawdzając, czy pokrywki są płaskie w poprzek płytki, i obróć ją w dół, aby zebrać cały płyn na dnie studzienek. Upewnij się, że każda studzienka ma taką samą objętość płynu i nie są widoczne żadne pęcherzyki. Następnie przenieś próbki do maszyny do PCR.

Otwórz program, wybierając "SYBR Green" z "Dissociation". Wybierz studzienki do analizy, wybierając "Nieznany" jako typ próbki i "SYBR" jako barwnik fluorescencyjny. Oznacz studzienki na układzie płytki informacjami o próbce, w tym tym, czy test dotyczy studzienki Lyssavirus, czy beta-aktyny.

Kliknij "Ustawienia profilu termicznego " i zmodyfikuj warunki cykli termicznych zgodnie z opisem w manuskrypcie. Kliknij "Start", a następnie wybierz lokalizację, w której chcesz zapisać plik, i zaznacz pole, aby wyłączyć lampę na końcu biegu. Gdy pojawi się opcja rozpoczęcia przed rozgrzaniem lampy, kliknij "Uruchom teraz", ale upewnij się, że lampa ma mniej niż 15 minut na rozgrzanie.

11:37

Jednoczesna ekstrakcja DNA-RNA z osadów przybrzeżnych i kwantyfikacja genów i transkryptów 16S rRNA metodą Real-time PCR

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:55

Wysokoprzepustowa platforma do badań przesiewowych w kierunku Salmonella spp./Shigella spp.

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:55

Wykrywanie wirusa Tilapia Lake za pomocą konwencjonalnego RT-PCR i SYBR Green RT-qPCR

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:26

Reverse Transcriptase Activity as a Marker for Virus-Like Particle Production

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:27

Measuring Hepatitis C Viral Load Using Quantitative Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:37

Opracowanie ilościowego testu amplifikacji polimerazy rekombinazy z wewnętrzną kontrolą pozytywną

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:36

Pomiar RNA wirusa dengi w supernatancie hodowli zakażonych komórek za pomocą ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy w czasie rzeczywistym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:10

Ocena uniwersalnej zagnieżdżonej reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkrypcją w celu wykrycia lyssawirusów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:25

Pan-lyssavirus RT-PCR w czasie rzeczywistym do diagnozowania wścieklizny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:40

Terenowy pośmiertny szybki immunochromatograficzny test diagnostyczny wścieklizny do zastosowań o ograniczonych zasobach z dalszymi zastosowaniami molekularnymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026