$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Reakcja łańcuchowa polimerazy topniejącej o wysokiej rozdzielczości, HRM-PCR, wykrywa dwuniciowe DNA, zmiany sekwencji dsDNA z dużą precyzją.
Rozpocząć od mieszaniny wzorcowej zawierającej nieaktywną polimerazę Taq, trifosforany dezoksyrybonukleotydowe - dNTP - i fluorescencyjny barwnik reporterowy. Dodaj startery do przodu i do tyłu. Odpipetować mieszaninę do dołków płytki PCR.
Dodaj szablon dsDNA. Uszczelnij płytę, zapobiegając parowaniu mieszaniny. Rozpocznij PCR.
Wysoka temperatura denaturacji denaturuje dsDNA do jednoniciowego DNA, ssDNA, i aktywuje polimerazę. Reakcja jest następnie schładzana do temperatury wyżarzania, ułatwiając wiązanie starterów do przodu i do tyłu z ssDNA poprzez specyficzne dla miejsca komplementarne parowanie zasad.
Aktywowana polimeraza zostaje zrekrutowana, rozszerzając dupleks startera DNA poprzez dodanie dNTP.
Fluorescencyjny barwnik reporterowy - barwnik specyficzny dla dsDNA obecny w stężeniach nasycających - interkaluje się w całym dupleksie, fluoryzując jasno. Duplex przechodzi wiele cykli PCR, wytwarzając kilka fragmentów zawierających warianty.
Po PCR przeprowadź analizę krzywej topnienia, stale zwiększając temperaturę reakcji w czasie.
W zależności od sekwencji nukleotydów, miejsce zawierające wariant może najpierw ulec denaturacji, uwalniając barwnik. Ponieważ pozostałe miejsca wiązania barwnika są nasycone, barwnik nie ulega ponownej interkalacji, co zmniejsza intensywność fluorescencji. Co więcej, dsDNA dysocjuje na ssDNA po stopniowym ogrzewaniu.
Zidentyfikuj temperaturę topnienia, w której połowa dsDNA ulega denaturacji do ssDNA z gwałtownym spadkiem fluorescencji. Przesunięcie krzywej topnienia amplifikowanych fragmentów DNA identyfikuje zmiany sekwencji nukleotydów próbki.
Aby wykonać protokół HRM-PCR, najpierw rozcieńczyć próbki DNA w 1,5-mililitrowych probówkach wodą do stężenia 10 nanogramów na mikrolitr. Następnie rozcieńczyć rozmrożone roztwory podkładu w 1,5-mililitrowych probówkach wodą do tego samego stężenia 6 mikromolowych. Rozmrozić roztwory zestawu HRM-PCR i ostrożnie wymieszać przez wirowanie, aby zapewnić odzyskanie całej zawartości.
Krótko odwiruj trzy fiolki zawierające mieszaninę enzymatyczną z barwnikiem wiążącym DNA, chlorkiem magnezu i wodą w mikrowirówce przed ich otwarciem. W 1,5-mililitrowej probówce o temperaturze pokojowej użyj składników do przygotowania mieszanki PCR do 120-mikrolitrowej reakcji, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Dokładnie wymieszaj, wirując.
Bardzo ważne jest, aby pracować z uwagą, nawigacją, zgodnie z dobrymi praktykami biologii molekularnej.
Odpipetować 19 mikrolitrów PCR do każdego dołka białej płytki wielodołkowej. Dodać 1 mikrolitr matrycy DNA o dostosowanym stężeniu, a następnie uszczelnić białą płytkę wielodołkową folią uszczelniającą. Odwirować białą płytkę wielodołkową przez 1 minutę przy 1500 razy g w standardowej wirówce z kubełkiem obrotowym zawierającej wirnik do płytek wielodołkowych z odpowiednimi adapterami. Załaduj białą płytkę wielodołkową do instrumentu HRM-PCR. Uruchom program HRM-PCR z warunkami PCR znalezionymi w protokole tekstowym.
Po reakcji HRM-PCR należy przeprowadzić analizę HRM w celu określenia polimorfizmu długości CR1, zgodnie z opisem w protokole tekstowym.