$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Cyfrowa reakcja łańcuchowa polimerazy - lub dPCR - jest przydatna do ilościowego określania wariantów pojedynczego nukleotydu - lub SNV - mutacji, w której podstawienie pojedynczego nukleotydu w określonej pozycji w genomie tworzy dwie odmiany nukleotydowe lub allele.
Aby rozpocząć kwantyfikację przy użyciu techniki dPCR typu chip-in-a-tube, należy pobrać próbkę DNA zawierającą SNV — zmutowany allel i odpowiadający mu allel typu dzikiego. Dodaj mieszaninę zawierającą termostabilny enzym polimerazę DNA, dNTP i startery.
Następnie dodaj sondy oligonukleotydowe specyficzne dla alleli - oznaczone reporterami o różnokolorowej fluorescencji w celu rozróżnienia alleli - i cząsteczkę wygaszającą. Bliskość wygaszacza do reportera hamuje jego fluorescencję.
Podziel roztwór na komory reakcyjne chipa mikroprzepływowego. Każda komora zawierająca allel służy jako niezależne naczynie reakcyjne.
Umieść rurkę z chipem w termocyklerze i rozpocznij reakcję. W wysokiej temperaturze dwuniciowe DNA ulega denaturacji na pojedyncze nici. Obniż temperaturę, aby wyżarzyć startery i sondy oligonukleotydowe do ich komplementarnych regionów.
W odpowiedniej temperaturze rozciągnięcia polimeraza DNA rozciąga startery i rozszczepia sondę. Odległość od wygaszacza umożliwia emisję fluorescencji reportera.
Odczytaj różnokolorowe sygnały fluorescencyjne i utwórz wykres pozycji, aby wykryć komory zawierające allele.
Aby określić częstość występowania zmutowanego allelu - frakcji wariantu allelu - oblicz stosunek komór zawierających mutanta do allelu typu dzikiego.
Dodaj wcześniej zaprojektowane startery, sondy i genomowe DNA do nowego 8-probówkowego paska, aby uzyskać całkowitą objętość 15 mikrolitrów. Pipetować w górę i w dół, aby wymieszać.
Dodaj platformę załadowczą na wióry wbudowane w świeżą taśmę z 8 rurami, a następnie umieść taśmę sitową w automatycznej ładowarce. Upewnij się, że wióry stykają się z platformą załadowczą. Następnie umieść suwak załadunku na platformie i użyj ogranicznika, aby przytrzymać suwak z ładowarki. Odpipetuj 15 mikrolitrów mieszaniny PCR w pobliżu końcówki suwaka, a następnie naciśnij przycisk ładowarki, aby uruchomić ładowarkę na 1 minutę.
Po zakończeniu pracy wyjmij pasek rurki z ładowarki i umieść go w wzmacniaczu uszczelniającym. Ostrożnie popchnij przesuwaną pokrywę i krawędź górnej pokrywy. Uruchom wzmacniacz uszczelniający na około 2 minuty. Jeśli uszczelnienie jest niekompletne, na co wskazuje kałuża płynu, powtórz bieg przez dodatkową minutę.
Dodaj 230 mikrolitrów płynu uszczelniającego do probówek. Umieść pasek probówki w termocyklerze i uruchom PCR zgodnie z opisem w protokole. Jeśli występuje nierównomierny rozkład przegród dodatnich, dostosuj temperaturę lub czas trwania PCR.
Aby wykryć i przeanalizować intensywność fluorescencji produktów PCR, umieść pasek probówki na przyrządzie detekcyjnym i dodaj 6 mililitrów wody destylowanej. Usuń wszelkie widoczne pęcherzyki powietrza za pomocą końcówki pipety.
Załaduj przyrząd do detektora. W oprogramowaniu detekcyjnym wybierz zakładki "Fluorescencja", "Eksperyment", a następnie "Próbka/NTC" i kliknij przycisk "Uruchom", aby rozpocząć uruchamianie. Po zakończeniu przebiegu potwierdź wykres pozycji, histogram i wykres rozrzutu 2D.
Aby zebrać produkt PCR, usuń płyn uszczelniający z probówki. Dodaj 100 mikrolitrów buforu TE i energicznie wiruj przez 30 sekund. Krótko odwirować probówki w wirówce stołowej i postępować zgodnie z opisem w protokole tekstowym, aby zakończyć zbieranie produktu PCR.