Western blotting pojedynczych komórek w celu określenia heterogeniczności komórek

0 wyświetleń4:43 min • July 8th, 2025

Miejsca zapalne zawierają różne komórki odpornościowe, w tym monocyty, makrofagi i leukocyty.

Aby zidentyfikować heterogeniczną populację komórek za pomocą jednokomórkowego western blotting, należy pobrać wstępnie uwodniony chip do bibuły, składający się z fotoaktywowanego żelu poliakrylamidowego uformowanego w bloki. W każdym bloku znajdują się liczne mikrodołki. Tworzenie wzoru w kilku blokach przechwytuje wiele komórek równolegle.

Dodać zawiesinę zawierającą niejednorodną populację komórek. Wymiary studni pozwalają na osiedlanie się pojedynczych komórek. Zanurz chip w komorze elektroforetycznej wypełnionej odpowiednim buforem. Cząsteczki detergentu w buforze rozrywają błonę komórkową, uwalniając zawartość komórkową.

Zastosuj pole elektryczne. Uwolnione białka migrują przez żel, rozdzielając się na pasma o różnej wielkości. Umyj chip buforem myjącym, aby usunąć niespecyficznie związane cząsteczki, pozostawiając tylko białka komórkowe, w tym pożądane białka markerowe.

Wystaw żel na działanie światła UV, aktywując jego powierzchnię i unieruchamiając białka.

Dodaj koktajl przeciwciał pierwszorzędowych, które wiążą się specyficznie z białkami markerowymi charakterystycznymi dla każdego typu komórki, tworząc kompleksy przeciwciał białkowo-pierwotnych. Dozować mieszaninę znakowanych fluorescencyjnie przeciwciał drugorzędowych, które wiążą odpowiednie przeciwciała pierwszorzędowe, znakując odpowiednie białko markerowe specyficzne dla komórki.

Umieść chip w skanerze. Zmierzyć intensywność fluorescencji, która jest proporcjonalna do poziomu ekspresji odpowiedniego markera białkowego specyficznego dla pojedynczej komórki zawiesiny próbki komórkowej.

W przypadku jednokomórkowej analizy Western blot dodaj 1 mililitr rozcieńczonej zawiesiny jednokomórkowej do uwodnionego jednokomórkowego chipa Western blot na dnie 10-centymetrowej szalki Petriego. Po pięciu do piętnastu minutach zbadaj chip pod mikroskopią w jasnym polu. Około 15% do 20% mikrostudzienek powinno być zajętych przez pojedynczą komórkę, a mniej niż 2% studzienek powinno zawierać dwie lub więcej komórek.

Jeśli chip został prawidłowo załadowany, przechyl naczynie o 45 stopni i umyj chip trzy razy buforem zawieszenia, aby usunąć wszelkie nieprzechwycone komórki. Po ostatnim praniu ostrożnie załaduj chip do ogniwa elektroforetycznego jednoogniwowego instrumentu Western gelside do góry i przykryj cały jednokomórkowy chip Western blot buforem do lizy/pracy. Zainicjuj lizę komórek i uruchom instrument zgodnie z odpowiednimi parametrami eksperymentu.

Pod koniec cyklu spłucz wióry dwoma 10-minutowymi myciami ze świeżym buforem do prania na pranie w temperaturze pokojowej. Po drugim płukaniu dodać 80 mikrolitrów podstawowego roztworu przeciwciała będącego przedmiotem zainteresowania do komory sondowania przeciwciał i opuścić chip żelową stroną do dołu, tak aby roztwór przeciwciała przesiąknął przez chip.

Po dwóch godzinach w temperaturze pokojowej umyj frytki trzy razy w buforze myjącym i raz w wodzie na shakerze. Inkubować chip z odpowiednim przeciwciałem wtórnym przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej, chroniąc przed światłem. Pod koniec inkubacji umyj chip trzykrotnie buforem do przemywania i zakręć wiórem na szkiełku, aby usunąć pozostały bufor do mycia.

Aby usunąć jednokomórkowy chip Western blot, umieść 50-mililitrowy stojak na probówki w łaźni wodnej o temperaturze 60 stopni Celsjusza, gdy woda znajduje się zaledwie 1 centymetr nad stojakiem. W dygestorium dodaj 40 mililitrów buforu odpędzającego i 320 mikrolitrów beta-merkaptoetanolu do kanistra. Umieść chip na 10-centymetrowej szalce Petriego wewnątrz kanistra i uszczelnij kanister parafilmem.

Następnie umieść kanister w stojaku na probówki w łaźni wodnej. Po 90 minutach ostrożnie przenieś wiór na nową szalkę Petriego i krótko umyj wiór jednym razem buforem do mycia, a następnie dodaj 15 mililitrów świeżego buforu do mycia na szalce Petriego w celu 15-minutowego mycia na wytrząsarce.

07:42

Model in vitro do badania heterogeniczności różnicowania i polaryzacji ludzkich makrofagów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:53

Proteomika ilościowa wykorzystująca dimetylację redukcyjną do znakowania stabilnych izotopów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:38

Ilościowa glikomika i proteomika połączone ze strategią oczyszczania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:02

Ilościowe Western Blot w celu oszacowania poziomów ekspresji białka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Profilowanie pojedynczych ludzkich embrionalnych komórek macierzystych za pomocą ilościowego RT-PCR

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:12

Wstępne wzbogacanie komórek docelowych i amplifikacja całego genomu w celu dalszej charakterystyki pojedynczej komórki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:45

Protokół Western Blotting dla małej liczby hematopoetycznych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:34

Kombinatoryczne podejście jednokomórkowe w celu scharakteryzowania molekularnej i immunofenotypowej heterogeniczności populacji ludzkich komórek macierzystych i progenitorowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:58

Ilościowe immunoblotting linii komórkowych jako standard walidacji immunofluorescencji do ilościowego określania białek biomarkerowych w rutynowych próbkach tkanek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:29

Kwantyfikacja jednorodności znakowania w całym proteomie na poziomie pojedynczej cząsteczki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026