JoVE Encyclopedia of Experiments
Techniki biologiczne
0 wyświetleń • 4:43 min • July 8th, 2025
Miejsca zapalne zawierają różne komórki odpornościowe, w tym monocyty, makrofagi i leukocyty.
Aby zidentyfikować heterogeniczną populację komórek za pomocą jednokomórkowego western blotting, należy pobrać wstępnie uwodniony chip do bibuły, składający się z fotoaktywowanego żelu poliakrylamidowego uformowanego w bloki. W każdym bloku znajdują się liczne mikrodołki. Tworzenie wzoru w kilku blokach przechwytuje wiele komórek równolegle.
Dodać zawiesinę zawierającą niejednorodną populację komórek. Wymiary studni pozwalają na osiedlanie się pojedynczych komórek. Zanurz chip w komorze elektroforetycznej wypełnionej odpowiednim buforem. Cząsteczki detergentu w buforze rozrywają błonę komórkową, uwalniając zawartość komórkową.
Zastosuj pole elektryczne. Uwolnione białka migrują przez żel, rozdzielając się na pasma o różnej wielkości. Umyj chip buforem myjącym, aby usunąć niespecyficznie związane cząsteczki, pozostawiając tylko białka komórkowe, w tym pożądane białka markerowe.
Wystaw żel na działanie światła UV, aktywując jego powierzchnię i unieruchamiając białka.
Dodaj koktajl przeciwciał pierwszorzędowych, które wiążą się specyficznie z białkami markerowymi charakterystycznymi dla każdego typu komórki, tworząc kompleksy przeciwciał białkowo-pierwotnych. Dozować mieszaninę znakowanych fluorescencyjnie przeciwciał drugorzędowych, które wiążą odpowiednie przeciwciała pierwszorzędowe, znakując odpowiednie białko markerowe specyficzne dla komórki.
Umieść chip w skanerze. Zmierzyć intensywność fluorescencji, która jest proporcjonalna do poziomu ekspresji odpowiedniego markera białkowego specyficznego dla pojedynczej komórki zawiesiny próbki komórkowej.
W przypadku jednokomórkowej analizy Western blot dodaj 1 mililitr rozcieńczonej zawiesiny jednokomórkowej do uwodnionego jednokomórkowego chipa Western blot na dnie 10-centymetrowej szalki Petriego. Po pięciu do piętnastu minutach zbadaj chip pod mikroskopią w jasnym polu. Około 15% do 20% mikrostudzienek powinno być zajętych przez pojedynczą komórkę, a mniej niż 2% studzienek powinno zawierać dwie lub więcej komórek.
Jeśli chip został prawidłowo załadowany, przechyl naczynie o 45 stopni i umyj chip trzy razy buforem zawieszenia, aby usunąć wszelkie nieprzechwycone komórki. Po ostatnim praniu ostrożnie załaduj chip do ogniwa elektroforetycznego jednoogniwowego instrumentu Western gelside do góry i przykryj cały jednokomórkowy chip Western blot buforem do lizy/pracy. Zainicjuj lizę komórek i uruchom instrument zgodnie z odpowiednimi parametrami eksperymentu.
Pod koniec cyklu spłucz wióry dwoma 10-minutowymi myciami ze świeżym buforem do prania na pranie w temperaturze pokojowej. Po drugim płukaniu dodać 80 mikrolitrów podstawowego roztworu przeciwciała będącego przedmiotem zainteresowania do komory sondowania przeciwciał i opuścić chip żelową stroną do dołu, tak aby roztwór przeciwciała przesiąknął przez chip.
Po dwóch godzinach w temperaturze pokojowej umyj frytki trzy razy w buforze myjącym i raz w wodzie na shakerze. Inkubować chip z odpowiednim przeciwciałem wtórnym przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej, chroniąc przed światłem. Pod koniec inkubacji umyj chip trzykrotnie buforem do przemywania i zakręć wiórem na szkiełku, aby usunąć pozostały bufor do mycia.
Aby usunąć jednokomórkowy chip Western blot, umieść 50-mililitrowy stojak na probówki w łaźni wodnej o temperaturze 60 stopni Celsjusza, gdy woda znajduje się zaledwie 1 centymetr nad stojakiem. W dygestorium dodaj 40 mililitrów buforu odpędzającego i 320 mikrolitrów beta-merkaptoetanolu do kanistra. Umieść chip na 10-centymetrowej szalce Petriego wewnątrz kanistra i uszczelnij kanister parafilmem.
Następnie umieść kanister w stojaku na probówki w łaźni wodnej. Po 90 minutach ostrożnie przenieś wiór na nową szalkę Petriego i krótko umyj wiór jednym razem buforem do mycia, a następnie dodaj 15 mililitrów świeżego buforu do mycia na szalce Petriego w celu 15-minutowego mycia na wytrząsarce.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje metodę identyfikacji heterogenicznych populacji komórkowych z wykorzystaniem westernu pojedynczych komórek. Technika ta opiera się na zastosowaniu fotoaktywnego żelu poliakrylamidowego, uformowanego w bloki z mikrowyrobami, które służą do wychwytywania poszczególnych komórek w celu przeprowadzenia analizy.
Western blotting pojedynczych komórek umożliwia zespołom badawczo-rozwojowym w sektorze biofarmaceutycznym analizę heterogeniczności ekspresji białek w obrębie populacji komórek odpornościowych, co jest kluczowym czynnikiem w ograniczaniu ryzyka podczas walidacji celów dla terapii immunomodulujących. Dzięki ilościowemu określeniu ekspresji markerów z rozdzielczością pojedynczych komórek, metoda ta zwiększa pewność predykcyjną w identyfikacji wiodących kandydatów na leki oraz redukuje niejednoznaczność mechanistyczną w przedklinicznych modelach stanu zapalnego. Możliwość ta usprawnia ciągłość translacyjną od etapu odkrycia po fazę przedkliniczną, dostarczając powtarzalnych danych ilościowych niezbędnych do podejmowania decyzji o kontynuacji lub przerwaniu dalszych badań.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkryć, od wczesnej fazy odkrywania (Early Discovery), poprzez identyfikację wiodących związków (Lead Identification), aż po prace przedkliniczne, wspierając weryfikację hipotez, przygotowanie testów oraz analitykę ilościową, zgodnie z opisem w źródle.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026