Biodetekcja polowa oparta na biosensorach grafenowych do wykrywania interakcji białko-białko

0 wyświetleń6:43 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Interakcje białko-białko (IPP) mają kluczowe znaczenie w regulacji większości procesów biologicznych.

Aby wykryć IPP za pomocą biodetekcji polowej, zacznij od grafenowego układu tranzystora polowego. Chip składa się z funkcjonalizowanej karboksylowo powierzchni grafenu jako półprzewodnikowego kanału między elektrodą źródłową a drenową.

Inkubować chip ze świeżym roztworem karbokodiimidu i N-hydroksysulfosukcynimidu, sulfo-NHS, w buforze obojotwórczym. Bufor ten wytwarza odpowiednie pH, umożliwiając karbodimidowi i sulfo-NHS aktywację funkcjonalizowanych grup karboksylowych chipa, tworząc estry reagujące z aminami.

Dodaj docelowy roztwór białka. Aminy pierwszorzędowe reagują z estrami reaktywnymi aminami, unieruchamiając białka na chipie poprzez tworzenie wiązań amidowych. Dodać roztwór hartowniczy zawierający aminy, aby zablokować niezwiązane estry reagujące z aminami, zapobiegając niespecyficznemu wiązaniu.

Włóż chip do czytnika elektronicznego i skalibruj go za pomocą bufora. Czytnik przykłada stałe napięcie między elektrodami. Mierzy się wynikowy przepływ prądu elektrycznego między elektrodami w stanie niezwiązanym analitu.

Dodać najniższe stężenie analitu. Interakcja między białkami analitu a celami unieruchomionymi na chipie zmienia lokalny rozkład ładunku na powierzchni grafenu, rejestrowany jako odpowiedź I – zmiana przepływu prądu między elektrodami.

Po nagraniu przemyć buforem w celu dysocjacji związanych analitów. Powtórzyć analizę ze zwiększającymi się stężeniami analitu.

Stopniowy wzrost odpowiedzi I wraz ze wzrostem stężeń analitu wskazuje na silne IPP między celem a analitem.

Rozpocząć od zmieszania równych objętości roztworu EDC i sulfo-NHS, pipetując w górę iw dół. Umieść chipy biosensorów dostarczone przez firmę na szklanej szalce Petriego z dopasowaną pokrywką. Sugeruje się, że wszystkie etapy funkcjonalizacji związane z aktywacją chipa są wykonywane na szalce Petriego. Nałóż 50 mikrolitrów 1 molowego buforu MES na chip biosensora. Inkubować przez 1 minutę w temperaturze pokojowej.

Następnie należy odessać bufor i natychmiast nanieść 50 mikrolitrów roztworu EDC/sulfo-NHS na chip czujnika. Przykryj szalkę Petriego i inkubuj przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Odessać roztwór EDC/sulfo-NHS z chipa i nałożyć 50 mikrolitrów 1 molowego buforu MES.

Odessać bufor MES i dwukrotnie przepłukać chip 50 mikrolitrami 1x PBS. Odessać PBS z chipa i dodać cząsteczkę docelową Hsp90. Przykryj szklaną szalkę Petriego i inkubuj przez 30 minut w temperaturze pokojowej. Następnie odessać roztwór zawierający cząsteczkę docelową i spłukać trzykrotnie 50 mikrolitrami 1x PBS.

Odessać roztwór 1x PBS z chipa i dodać 50 mikrolitrów roztworu Quench 1. Przykryj szklaną szalkę Petriego i inkubuj przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Odessać roztwór Quench 1 z chipa i dodać 50 mikrolitrów roztworu Quench 2. Przykryj szklaną szalkę Petriego i inkubuj przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Następnie odessać roztwór Quench 2 z chipa i przepłukać chip pięć razy za pomocą 50 mikrolitrów 1X PBS, pozostawiając ostatnią kroplę PBS na czujniku.

Przygotować serię rozcieńczeń analitu dla Cdc37 w żądanym zakresie stężeń. Zaplanuj eksperyment tak, aby obejmował co najmniej osiem różnych stężeń analitu w celu uzyskania wiarygodnej stałej dysocjacji lub wartości Kd, a następnie przygotuj te różne rozcieńczenia w tym samym buforze używanym do kalibracji i białka docelowego.

Ostrożnie umieść chip w instrumencie. Upewnij się, że oprogramowanie jest włączone, a dioda LED zmieni kolor na zielony. Następnie naciśnij moduł "Uruchom eksperyment" w zautomatyzowanym oprogramowaniu i wybierz "10 punktów z regeneracją" lub dowolny inny żądany protokół. Wypełnij szczegóły, takie jak nazwa operatora, nazwa eksperymentu, data, bufor regeneracyjny, unieruchomiony cel i analit w roztworze. Naciśnij przycisk "Rozpocznij eksperyment" wyświetlany w oprogramowaniu i postępuj zgodnie z instrukcjami wyświetlanymi przez zautomatyzowane oprogramowanie.

Aby przeprowadzić kalibrację przyrządu, należy odessać pozostały roztwór PBS z chipa i nałożyć 50 mikrolitrów bufora kalibracyjnego. Naciśnij przycisk "Kontynuuj" i poczekaj pięć minut, aż etap kalibracji zostanie zakończony. Oprogramowanie wyświetla punkt końcowy wyznaczony dla etapu kalibracji z alarmem ostrzegawczym w celu podjęcia dalszych działań.

Następnie wykonaj asocjację analitu, odsysając bufor kalibracyjny z chipa i stosując 50 mikrolitrów o najniższym stężeniu analitu. Naciśnij przycisk "Kontynuuj" i poczekaj pięć minut, aż krok kojarzenia zostanie zakończony. Oprogramowanie wyświetla punkt końcowy kroku asocjacji z alarmem ostrzegawczym, aby kontynuować.

Aby przeprowadzić dysocjację analitu, należy odessać roztwór analitu z chipa i nałożyć 50 mikrolitrów buforu dysocjacyjnego. Naciśnij przycisk "Kontynuuj". Po upływie czasu trwania etapu dysocjacji oprogramowanie wyświetla punkt końcowy etapu dysocjacji z alarmem ostrzegawczym.

Następnie należy przeprowadzić regenerację chipa, odsysając roztwór dysocjacyjny z chipa i nakładając 50 mikrolitrów bufora regeneracyjnego. Następnie naciśnij przycisk "Kontynuuj". Etap regeneracji trwa zwykle około 30 sekund. Następnie oprogramowanie wyświetla punkt końcowy etapu regeneracji z alarmem ostrzegawczym, który należy kontynuować.

Na koniec, aby umyć chip, odessać roztwór regeneracyjny z chipa i nałożyć 50 mikrolitrów buforu do płukania. Odessać roztwór z chipa i powtórzyć to pięć razy. Pozostaw ostatnią kroplę buforu do płukania na chipie. Następnie naciśnij przycisk "Kontynuuj" i odczekaj 30 sekund, aż czas trwania kroku prania zakończy się na wyświetlaczu oprogramowania.

Powtórz kroki dla każdego zastosowanego stężenia analitu. Pięć etapów kalibracji, asocjacji analitu, dysocjacji, regeneracji i pięciokrotnego mycia stanowi jeden cykl.

11:25

Przygotowanie tranzystora polowego z nanodrutu krzemowego do zastosowań chemicznych i biosensorycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:05

In vitro Wieloparametryczna analiza komórkowa za pomocą mikroorganicznych matryc tranzystorów polowych z modulacją ładunku

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Opracowanie i funkcjonalizacja grafenowego tranzystora polowego bramkowanego elektrolitem do detekcji biomarkerów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:43

Test biosensoryczny konduktometryczny na bazie β-laktamazy do interakcji białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:20

Wytwarzanie nanoelektronicznego biosensora wysokiej częstotliwości z nanorurek węglowych do wykrywania w roztworach o wysokiej sile jonowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:06

Zastosowanie testu konduktometrycznego biosensora na bazie β-laktamazy do wykrywania oddziaływań biomolekularnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:42

Elektrochemiczna platforma biosensorów mikroprzepływowych oparta na suchym filmie fotorezystu: produkcja urządzenia, przygotowanie testu na chipie i obsługa systemu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

17:16

Opracowanie elektrochemicznego biosensora DNA do wykrywania patogenów przenoszonych przez żywność

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:22

Ultraczułe wykrywanie biomarkerów za pomocą biosensora pojemnościowego opartego na imprintingu molekularnym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Badanie interakcji biomolekularnych między molekularnym chaperonem Hsp90 a jego klientem, kinazą białkową Cdc37, przy użyciu technologii biodetekcji z efektem polowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026