$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Aby zbadać specyficzne interakcje białko-białko u żywych bakterii za pomocą mikroskopii obrazowania czasu życia fluorescencji, FLIM, w połączeniu z transferem energii rezonansu Förster, FRET, należy rozpocząć od rekombinowanej zawiesiny bakteryjnej. Bakterie wyrażają specyficzne białka cytoplazmatyczne zaangażowane w szlaki metaboliczne, znakowane białkami fluorescencyjnymi donorowymi i akceptorowymi odpowiednimi dla FRET.
Umieść zawiesinę bakteryjną na waciku agarozowym, która unieruchamia bakterie na szkiełku mikroskopowym. Umieść szkiełko nakrywkowe na szkiełku podstawowym i zamknij.
Umieść szkiełko na stoliku mikroskopu skaningowego z odwróconym wzbudzeniem dwufotonowym do mikroskopii FLIM-FRET. Użyj lampy fluorescencyjnej, aby wybrać i zeskanować interesujący obszar na monowarstwie bakteryjnej.
Interakcja między eksprymowanymi białkami cytoplazmatycznymi zbliża do siebie białka fluorescencyjne donorowe i akceptorowe w odpowiedniej orientacji. Po naświetleniu laserem o odpowiedniej długości fali, białko fluorescencyjne dawcy zostaje wzbudzone.
Bliskie sąsiedztwo białek fluorescencyjnych wyzwala FRET, co prowadzi do nieradiacyjnego transferu energii od dawcy do akceptora białek fluorescencyjnych, które zostają wzbudzone i ostatecznie wracają do stanu podstawowego, emitując fluorescencję.
Nieradiacyjny transfer energii skraca czas potrzebny na powrót wzbudzonego białka fluorescencyjnego donora do stanu podstawowego, czasu życia fluorescencji dawcy - mierzonego za pomocą FLIM. Zmniejszenie średniego czasu życia fluorescencji białka fluorescencyjnego dawcy spowodowane FRET potwierdza interakcję białko-białko w bakteriach.
Umieść szklane szkiełko mikroskopowe na płaskiej poziomej powierzchni i ułóż wokół niego dwie szklane szkiełka przykryte dwiema warstwami taśmy klejącej. Odpipetować 70-mikrolitrową kroplę 1% stopionej agarozy na szklane szkiełko i umieścić czwarte szkiełko na górze, aby spłaszczyć kroplę agarozy. Delikatnie dociśnij przez około minutę.
Zdejmij górne szkiełko i upuść około trzech mikrolitrów bakterii w trzech do czterech miejscach w różnych miejscach na podkładce agarozowej. Przykryj wacik agarozowy szkiełkiem nakrywkowym ze szkła mikroskopowego i przymocuj go stopioną parafiną, aby uszczelnić go na szkiełku podstawowym, zaczynając od czterech rogów.
Umieść szkiełko mikroskopowe na stoliku, tak aby szkiełko nakrywkowe było skierowane w stronę obiektywu. Obróć wieżyczkę kostki filtra, aby wybrać kostkę eGFP i otwórz przesłonę lampy fluorescencyjnej. Następnie wyślij światło fluorescencyjne w kierunku okularu mikroskopu. Ustaw ostrość obiektywu na bakteriach za pomocą pokrętła mikroskopu.
Wybierz obszar zainteresowania w próbce za pomocą joysticka, który steruje zmotoryzowanym stolikiem. Wyślij ścieżkę emisji fluorescencji z powrotem w kierunku detektora, a następnie odwróć wieżyczkę kostki filtra, aby wybrać sześcian dichroiczny dla lasera 930 nanometrów i ustaw moc lasera na 20 miliwatów. Ustaw rozmiar obszaru zainteresowania na 30 mikrometrów, co dostosowuje napięcie sterujące lustrami galvo i określa zakres ich ruchów.
Włącz detektor i rozpocznij skanowanie próbki. Wybierz pole widzenia do obrazowania, na koniec przesuwając stolik z interfejsu komputera. Można to zrobić podczas konfiguracji, przesuwając krzyżyk na obrazie w oprogramowaniu sterującym mikroskopem, które zdefiniuje nowy środek obrazu, i naciskając "Przesuń stolik".
Dobre pole widzenia do akwizycji powinno zawierać od 10 do 30 nieruchomych bakterii, wszystkie w ostrości. Jeśli jesteś zainteresowany ekstrakcją danych FLIM-FRET z pojedynczych komórek, upewnij się, że bakterie są dobrze zindywidualizowane.