Test przesunięcia ruchliwości elektroforetycznej do wykrywania kompleksów czynnik transkrypcyjny-DNA

0 wyświetleń4:31 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Białka regulatorowe, takie jak czynniki transkrypcyjne, rozpoznają i wiążą się z określonymi sekwencjami DNA w regionach promotorowych, regulując ekspresję genów.

Aby wykryć specyficzne interakcje czynnik transkrypcyjny-DNA za pomocą testu przesunięcia ruchliwości elektroforetycznej, należy rozpocząć od rurki zawierającej pożądany czynnik transkrypcyjny i specyficzne krótkie, znakowane barwnikiem fluorescencyjnym sondy DNA w podczerwieni w buforze wiążącym. Inkubuj w ciemności, zapobiegając fotowybielaniu barwnika.

Siła jonowa i pH buforu zapewniają odpowiednie warunki dla czynnika transkrypcyjnego do identyfikacji i wiązania określonych sekwencji wiążących na sondzie DNA. Jony magnezu w buforze dodatkowo stabilizują kompleksy białko-DNA.

Dodaj odpowiedni barwnik ładujący do mieszanki, pomagając zobrazować postęp elektroforezy. Załaduj tę mieszaninę i sondy DNA do studzienek prefabrykowanego, niedenaturującego żelu poliakrylamidowego.

Wykonaj elektroforezę w ciemności.

Przyłożone pole elektryczne powoduje, że niezwiązane, ujemnie naładowane sondy DNA o niskiej masie cząsteczkowej przemieszczają się przez żel w kierunku dodatnio naładowanych anod. Jednak duże kompleksy białko-sonda DNA – o większej masie cząsteczkowej – migrują powoli, co prowadzi do opóźnionej migracji i zmiany ruchliwości DNA w żelu.

Po elektroforezie zeskanuj żel za pomocą systemu obrazowania w podczerwieni, wizualizując sondy DNA znakowane barwnikiem fluorescencyjnym w podczerwieni.

Wolna prążek sondy DNA znajduje się na dnie żelu, podczas gdy kompleksy białko-DNA pojawiają się jako przesunięte pasmo na żelu, co wskazuje na tworzenie się kompleksu białko-DNA.

Przygotuj 1 mililitr 5-krotnego buforu wiążącego, mieszając Tris-HCl, chlorek sodu, chlorek potasu, chlorek magnezu, EDTA, DTT, BSA i podwójnie destylowaną wodę.

Przed rozpoczęciem reakcji wiązania należy wstępnie uruchomić 5% natywny żel poliakryloamidowy w 0,5 X TBE i 2,5% glicerolu, aby usunąć wszelkie ślady nadsiarczanu amonu przy napięciu 80 V przez 30 minut do 1 godziny lub do momentu, gdy prąd przestanie się zmieniać w czasie.

Następnie wymieszaj 4 mikrolitry buforu wiążącego 5X, 80 do 200 nanogramów oczyszczonego białka A, 1 mikrolitr 0,1-mikromolowej sondy sprzężonej z barwnikiem i podwójnie destylowaną wodę. Inkubuj mieszaninę w temperaturze pokojowej w ciemności przez 15 minut.

Po inkubacji załaduj całą reakcję wiązania na żel i uruchom żel pod napięciem 10 woltów na centymetr na żądaną odległość. Przykryj aparat żelowy aluminium, aby żel był jak najbardziej w ciemności.

Wyczyść łóżko skanera systemu obrazowania w podczerwieni wodą destylowaną. Wytrzyj do sucha szklane płytki zawierające żel i umieść je na łóżku skanera. Otwórz oprogramowanie do obrazowania w podczerwieni i kliknij kartę "Pobierz".

W przypadku grubszych płyt użyj ustawień "700" dla "Kanału", "Auto" dla "Intensywności", "84 mikrometry" dla "Rozdzielczości", "Średnia" dla "Jakości" i "3.5 milimetra" dla "Przesunięcia ostrości". Wybierz obszar, który żel zajmuje na skanerze. Na koniec kliknij "Start", aby rozpocząć skanowanie.

06:36

Pozioma elektroforeza żelowa w celu lepszego wykrywania kompleksów białko-RNA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:38

Test aktywności polimerazy DNA przy użyciu znakowanego fluorescencyjnie DNA w bliskiej podczerwieni wizualizowanego za pomocą elektroforezy w żelu akrylowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:06

Fluorescencyjna wizualizacja RNA znakowanego mango w żelach poliakrylamidowych metodą poststainingu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:00

Anizotropia fluorescencyjna w celu określenia powinowactwa wiązania czynnika transkrypcyjnego i DNA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:43

Test ilościowy do badania interakcji białko-DNA, odkrywania transkrypcyjnych regulatorów ekspresji genów i identyfikowania nowych środków przeciwnowotworowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:24

Metoda DAP-chip oczyszczona z powinowactwa DNA do określania celów genowych dla dwuskładnikowych systemów regulacyjnych bakteryjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:14

Testy biochemiczne do analizy aktywności enzymów remodelujących chromatynę zależnych od ATP

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:44

Test przesunięcia ruchliwości elektroforetycznej (EMSA) do badania interakcji RNA-białko: przykład IRE/IRP

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:35

Badania przesiewowe w kierunku funkcjonalnych niekodujących wariantów genetycznych przy użyciu testu przesunięcia ruchliwości elektroforetycznej (EMSA) i testu precypitacji powinowactwa DNA (DAPA)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:58

Zoptymalizowany protokół do oznaczania przesunięcia ruchliwości elektroforetycznej przy użyciu oligonukleotydów znakowanych barwnikiem fluorescencyjnym w podczerwieni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026