Ilościowa cytometria przepływowa do badania znakowanych interakcji pęcherzyków białko-fosfolipid

0 wyświetleń2:43 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Interakcje białkowo-fosfolipidowe na błonie komórkowej mają kluczowe znaczenie dla regulacji kilku procesów komórkowych.

Aby wykryć docelowe interakcje białko-fosfolipid in vitro za pomocą ilościowej cytometrii przepływowej, należy pobrać probówkę zawierającą pożądane stężenie pęcherzyków fosfolipidowych o wielkości mikronów, znakowanych lipofilowym barwnikiem - w buforze.

Dodać odpowiednie stężenie różnych znakowanych fluorescencyjnie białek docelowych w roztworze.

Wstrzyknąć zawiesinę do cytometru przepływowego. Ustaw parametry systemu fluidics na niskie natężenie przepływu, aby zapewnić wystarczająco dużo czasu na interakcje białko-fosfolipid.

Gdy znakowane fluorescencyjnie białka i pęcherzyki fosfolipidowe oddziałują w kanale przepływowym, stężenie białek związanych z pęcherzykami wzrasta.

Gdy kompleksy te przechodzą przez wiązki laserowe ze specyficznych kanałów fluorescencyjnych zapewniających odpowiednie długości fal, ulegają wzbudzeniu. Te wzbudzone białka i pęcherzyki fosfolipidowe w kompleksie emitują odpowiednie sygnały fluorescencyjne po relaksacji do stanu podstawowego, które są wychwytywane przez odpowiednie detektory.

Wykrycie wysokiej średniej intensywności fluorescencji białek wskazuje na wiązanie białek z pęcherzykami fosfolipidowymi.

Rozpocznij eksperymenty z wiązaniem kinetycznym od rozcieńczenia pęcherzyków fosfolipidowych w buforze Tyrode'a do stężenia 1 mikromola i całkowitej objętości 250 mikrolitrów. Następnie wymieszaj znakowany fluorescencyjnie czynnik krzepnięcia X lub fX-fd o stężeniu 500 nanomolowych z pęcherzykami fosfolipidowymi w stosunku 1:1, aby uzyskać całkowitą objętość 500 mikrolitrów.

Natychmiast wstrzyknąć 500 mikrolitrów zmieszanej zawiesiny do cytometru przepływowego przy natężeniu przepływu o długości fali wzbudzenia 488 nanometrów i filtrze emisyjnym 585 nanometrów o szerokości 42 dla kanału FL2.

Następnie zmierz średnią fluorescencję w kanale FL4 ze wzbudzeniem na 633 nanometrach i filtrem emisyjnym na 660 nanometrach o szerokości 20. Po osiągnięciu nasycenia wiązania należy szybko rozcieńczyć próbkę 20-krotnie buforem Tyrode'a i monitorować dysocjację aż do osiągnięcia podstawowej fluorescencji lub plateau.

11:22

Wykorzystanie trójkolorowego jednocząsteczkowego FRET do badania korelacji oddziaływań białek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:10

Ultraszybka rekonstytucja białek błonowych w dwuwarstwach lipidowych bez użycia fusogenicznych proteoliposomów naładowanych komplementarnie.

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:12

Charakterystyka podzbiorów ludzkich monocytów za pomocą analizy cytometrii przepływu krwi pełnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:33

Chromatografia powinowactwa za pośrednictwem pęcherzyków lipidowych z wykorzystaniem sortowania komórek aktywowanych magnetycznie (LIMACS): nowa metoda analizy interakcji białko-lipid

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:11

Analiza cytometryczna cytometrii dwucząsteczkowej komplementacji fluorescencji: wysokoprzepustowa metoda ilościowa do badania interakcji białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Techniki analizy pęcherzyków zewnątrzkomórkowych za pomocą cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:52

Znakowanie radioaktywne i oznaczanie ilościowe poziomów komórkowych fosfoinozytydów za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej sprzężonej z przepływem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:32

Wyznaczanie względnej powierzchni komórki i całkowitej ekspresji rekombinowanych kanałów jonowych za pomocą cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:58

-on-a-chip: bezznacznikowe badanie interakcji białko-fosfoinozytyd

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:38

Fosfomorfometria przepływowa z fluorescencyjnym kodowaniem kreskowym komórek do analizy sygnalizacji pojedynczej komórki i odkrywania biomarkerów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026