$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Chimeryczne onkogenne białko fuzyjne zawiera N-końcową domenę o niskiej złożoności, LCD, białka wiążącego RNA połączonego z domeną wiążącą DNA, DBD, białka czynnika transkrypcyjnego. Białka te tworzą kondensat białkowy, który rekrutuje polimerazę RNA-II i napędza onkogenezę.
Aby zobrazować składanie się kondensatów białkowych za pomocą obrazowania pojedynczych cząsteczek, zacznij od komórki przepływowej DNA ― szkiełka ze stopionego szkła krzemionkowego wyposażonego w wlotowe i wylotowe porty iniekcyjne. Powierzchnia komory przepływowej jest pokryta biotynylowaną dwuwarstwą lipidową w celu ochrony powierzchni i wykonana z bariery zygzakowatej.
Podłącz go do systemu mikroprzepływowego. Wprowadzić roztwór streptawidyny, który wiąże się ze swoim ligandem o wysokim powinowactwie, biotyną, na warstwie lipidowej. Wstrzyknąć dwuniciowe DNA lambda znakowane biotyną, które zawiera wiele powtórzeń sekwencji wiążących białka fuzyjne. Streptawidyna dwuwarstwy lipidowej wiąże się z biotyną DNA i przyłącza DNA lambda do dwuwarstwy.
Przepłukać odpowiednim buforem. Siła hydrodynamiczna jego przepływu prostuje zakotwiczone cząsteczki DNA, pozwalając im zwisać jako zasłony DNA nad barierami.
Umieść komórkę przepływową pod mikroskopem fluorescencyjnym. Wstrzyknąć roztwór zielonych fluoroforów wiążących DNA. Następnie wstrzyknąć roztwór białka fuzyjnego oznaczonego do wiążącego białko amarantowego fluoroforu za pośrednictwem jego domeny LCD i inkubować.
Oznaczone białka fuzyjne wiążą się z sekwencją docelową na DNA lambda, tworząc kondensaty na całej długości DNA. Po wzbudzeniu fluorofory związane z DNA i białkami fluoryzują.
Kondensaty białek fuzyjnych pojawiają się jako purpurowa puncta na zielonym, fluorescencyjnie znakowanym dwuniciowym DNA.
Aby zobrazować tworzenie się kondensacji EWS-FLI1 na kurtynach DNA, otwórz oprogramowanie do obrazowania i znajdź i zaznacz pozycje dziewięciu zygzakowatych wzorów w jasnym polu. Następnie włącz przepływ z prędkością 0,2 mililitra na minutę, aby zabarwić DNA dwuniciowym barwnikiem DNA przez 10 minut.
Następnie rozcieńczyć białko mCherry-EWS-FLI1 buforem obrazowania o stężeniu 100 nanomoli i 100 mikrolitrów. Następnie załaduj próbkę białka przez zawór za pomocą szklanej strzykawki o pojemności 100 mikrolitrów i zmień natężenie przepływu na 0,4 mililitra na minutę.
Po włączeniu lasera 488-nanometrowego należy wstępnie zeskanować każdy region, aby sprawdzić stan dystrybucji DNA i wybrać region, w którym cząsteczki DNA rozkładają się równomiernie. Następnie ustaw moc lasera na 10% dla lasera 488-nanometrowego i 20% dla lasera 561-nanometrowego i za pomocą miernika mocy zmierz rzeczywistą moc lasera w pobliżu pryzmatu.
Rozpocznij rejestrowanie obrazów w dwusekundowych odstępach za pomocą laserów 488 i 561 nm jednocześnie. Następnie zmień zawór z trybu ręcznego na tryb wtrysku, aby bufor obrazowania mógł wypłukać próbkę białka do komórki przepływowej po 60 sekundach.
Aby usunąć wolny EWS-FLI1, należy myć celę przepływową buforem obrazowania przez pięć minut, gdy włączony jest tylko laser 561 nm. Następnie zatrzymaj przepływ i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut.
Po 10 minutach włącz przepływ z prędkością 0,4 mililitra na minutę, aby DNA mogło się rozszerzyć, i uzyskuj obrazy w dwusekundowych odstępach między różnymi klatkami, aby uzyskać wysokoprzepustowe dane dotyczące tworzenia się kondensatu EWS-FLI1.