Biopanowanie oparte na biosensorach mikrowagi kwarcowej do badania interakcji białko-lek

0 wyświetleń5:13 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby zbadać interakcje białko-lek, zacznij od mikrowagi kwarcowo-kryształowej, QCM, chipa czujnika składającego się z piezoelektrycznego materiału ceramicznego pokrytego cienką warstwą złota działającą jak elektroda.

Nałóż na elektrodę roztwór badanego leku, tworząc jednolitą warstwę.

Włóż chip czujnika do aparatu QCM. Zanurz go w kuwecie zawierającej bufor. Zastosuj pole elektryczne, powodując oscylacje kryształów ceramicznych ze stałą częstotliwością w oparciu o masę cząsteczek leku na chipie czujnika.

Dodaj bibliotekę fagów T7 zawierającą mieszaninę genetycznie modyfikowanych fagów wykazujących warianty peptydów połączone z białkiem kapsydu faga. Fagi wykazujące specyficzny peptyd wiążą się z cząsteczkami leku o wysokim powinowactwie i zostają unieruchomione na chipie czujnika. To panoramowanie fagów T7 zwiększa masę na chipie czujnika, co powoduje zmniejszenie oscylacji kryształów w czasie.

Po zrównoważeniu przenieś chip czujnika związany z fagiem na wilgotną szalkę Petriego. Nałóż chip na roztwór bakteryjny i inkubuj. Fagi infekują bakterie i replikują się, wytwarzając specyficzne fagi wykazujące ekspresję peptydów, które są uwalniane w roztworze.

Odzyskaj te fagi i przeanalizuj sekwencję aminokwasową peptydów wybranych pod kątem powinowactwa do leków. Porównaj sekwencję aminokwasową tego peptydu z białkiem docelowym.

Region o wysokim podobieństwie reprezentuje potencjalne miejsce interakcji leku, które ma kluczowe znaczenie dla interakcji lek-białko.

Aby przygotować chip czujnika QCM, przymocuj ceramiczny chip czujnika do oscylatora 27-megahercowego aparatu QCM i zarejestruj wewnętrzną częstotliwość w fazie powietrznej przed unieruchomieniem małych cząsteczek.

Po nagraniu odłącz chip i ostrożnie dodaj 20-mikrolitrową kroplę 1-milimolowego pochodnego drobnocząsteczkowego roztworu w 70% etanolu, aby utworzyć samoorganizującą się monowarstwę na złotej elektrodzie chipa czujnika. Umieść chip na szalce Petriego wyłożonej zwilżoną chusteczką chronioną przed światłem przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej, a następnie delikatnie umyj powierzchnię elektrody ultraczystą wodą.

Wysuszyć chip delikatnym naniesieniem powietrza i załadować go do aparatu QCM. Po 1 godzinie zapisz zmniejszenie częstotliwości w fazie powietrznej, aby zmierzyć ilość małej cząsteczki, która została unieruchomiona.

W przypadku biopanoramowania biblioteki fagów T7 umieść kuwetę z dedykowanym mieszadłem magnetycznym na biosensorze QCM ustawionym na 1,000 obrotów na minutę i dodaj 8 mililitrów buforu reakcyjnego do kuwety.

Podczas mieszania bufora podłącz chip czujnika QCM do oscylatora. Pociągnij ramię oscylatora w dół, aby zanurzyć chip w buforze i rozpocząć monitorowanie częstotliwości QCM. Gdy sensorgram zrównoważy się z około 3 hercami na minutę dryft częstotliwości, wstrzyknij 8 mikrolitrów biblioteki fagów T7 do kuwety i zaznacz punkt wstrzyknięcia na czujniku.

Monitoruj zmniejszenie częstotliwości spowodowane wiązaniem się fagów T7 z małą cząsteczką unieruchomioną na powierzchni złotej elektrody. Po 10 minutach zatrzymaj monitor częstotliwości QCM i szybko podnieś oscylator, aby usunąć chip czujnika z partii. Odłącz chip czujnika od oscylatora i wyjmij bufor z chipa.

Umieść wysuszony chip czujnika na wilgotnej szalce Petriego i dodaj 20-mikrolitrową kroplę komórek gospodarza E. coli w fazie logarytmicznej na złotą elektrodę. Inkubować naczynie na 96-dołkowym mikserze do mikropłytek w temperaturze 37 stopni Celsjusza i od 1000 do 1500 obrotów na minutę przez 30 minut, chroniąc przed światłem, aby zwiększyć odzysk związanych fagów T7.

Pod koniec inkubacji przenieść 20 mikrolitrów zawiesiny E. coli do 200 mikrolitrów pożywki LB. Zgodnie z ogólną procedurą należy przeprowadzić izolację płytki fagowej w pożywce i sekwencjonowanie DNA, które koduje sekwencje peptydowe rozpoznające lek wyświetlane na każdym kapsydzie faga.

08:34

Szybka i ilościowa metoda fluorymetryczna do badań przesiewowych leków małocząsteczkowych ukierunkowanych na białka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:11

Mikrograwimetria dyssypatywna do badania dynamiki wiązania białka wiążącego fosfolipidy aneksyny A2 z dwuwarstwami lipidowymi na podłożu stałym za pomocą rezonatora kwarcowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:17

Tworzenie wysoce specyficznych, chemicznie indukowanych systemów dimeryzacji białek poprzez stopniową selekcję fagów w kombinatorycznej bibliotece przeciwciał jednodomenowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:51

Monitorowanie adsorpcji białek za pomocą nanoporów w stanie stałym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:43

Biodetekcja polowa oparta na biosensorach grafenowych do wykrywania interakcji białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:43

Test biosensoryczny konduktometryczny na bazie β-laktamazy do interakcji białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:56

Nanomechanika oddziaływań lek-cel i wykrywanie oporności na leki przeciwbakteryjne

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:07

Sondowanie funkcjonalnych mikromacierzy białkowych o dużej gęstości w celu wykrycia interakcji białko-białko

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:46

Elektroniczny język generujący ciągłe wzorce rozpoznawania do analizy białek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:27

Oznaczanie kinetyki wiązania przeciwciało-antygen o wysokim powinowactwie przy użyciu czterech platform biosensorowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026