Izolacja monocytów z krwi pełnej za pomocą negatywnej selekcji immunomagnetycznej

0 wyświetleń4:27 min • July 8th, 2025

Aby wyizolować monocyty, rodzaj białych krwinek, z krwi pełnej metodą negatywnej selekcji immunomagnetycznej, należy pobrać w probówce krew ludzką potraktowaną antykoagulantem. Dodać roztwór koktajlu przeciwciał zawierający przeciwciała blokujące receptor Fc i bispecyficzne kompleksy przeciwciał tetramerycznych.

Każdy kompleks przeciwciał składa się z dwóch przeciwciał monoklonalnych, z których jedno jest specyficzne dla antygenów powierzchniowych komórek na komórkach niemonocytowych, w tym krwinek białych i czerwonych, a drugie przeciwciało specyficzne dla dekstranu.

Dodaj roztwór kulek magnetycznych pokrytych dekstranem. Inkubować. Przeciwciało blokujące receptor Fc wiąże się z receptorem Fc monocytów, zapobiegając niespecyficznemu wiązaniu przeciwciał monoklonalnych.

Przeciwciała monoklonalne w kompleksach przeciwciał rozpoznają i wiążą się ze specyficznymi antygenami powierzchniowymi komórek na komórkach niemonocytowych, pozostawiając monocyty nieznakowane. Kulki magnetyczne pokryte dekstranem wiążą się z przeciwciałem anty-dekstranowym kompleksów przeciwciał, sieciując komórki niemonocytowe z kulkami.

Umieść rurkę w uchwycie magnetycznym. Pod wpływem pola magnetycznego o wysokim gradiencie komórki usieciowane kulkami magnetycznymi wiążą się ze ściankami rurki, pozostawiając monocyty w środku rurki.

Odpipetować roztwór zawierający monocyty, przenieść do świeżej probówki. Dodaj koraliki magnetyczne, sieciując pozostałe niechciane komórki. Umieść pod wpływem pola magnetycznego, wzbogacając populację monocytów.

Przenieść zawiesinę monocytów do świeżej probówki. Odwirować zawiesinę. Ponownie zawiesić monocyty w buforze w celu dalszej analizy.

Po zebraniu 40 mililitrów świeżej ludzkiej krwi pełnej w czterech 10-mililitrowych probówkach próżniowych EDTA, użyj sterylnej techniki, aby przenieść całą krew do jednej 50-mililitrowej stożkowej probówki propylenowej w komorze bezpieczeństwa biologicznego. Postępując zgodnie z instrukcjami producenta z wybranego zestawu do izolacji monocytów ludzkich, dodaj 2 mililitry koktajlu do izolacji monocytów z zestawu do probówki z krwią i wiruj kulki magnetyczne z zestawu przez 30 sekund.

Dodaj 2 milimetry kulek do krwi i użyj 25-mililitrowej pipety serologicznej, aby ostrożnie wymieszać kulki z krwią. Po pięciu minutach w temperaturze pokojowej podziel krew równo między cztery 50-mililitrowe probówki i dodaj 30 mililitrów sterylnego PBS uzupełnionego 1 milimolowym EDTA do każdej probówki. Wymieszaj ponownie plastikową pipetą serologiczną o pojemności 25 mililitrów i umieść probówki w uchwytach magnetycznych.

Po 10 minutach za pomocą pipety pobrać zawartość ze środka każdej probówki, uważając, aby nie zassać więcej niż 1 mililitr czerwonych krwinek, a następnie dozować zawartość probówki do jednej z czterech nowych probówek o pojemności 50 mililitrów. Dodaj 500 dodatkowych mikrolitrów wirowych kulek magnetycznych do każdej probówki i delikatnie wymieszaj roztwór komórek. Umieść probówki z powrotem w uchwytach magnetycznych na pięć minut, a następnie ostrożnie przenieś zawartość ze środka każdej probówki do jednej z czterech nowych 50-milimetrowych probówek.

Po przeniesieniu wszystkich zawiesin komórek umieść każdą nową 50-mililitrową probówkę w uchwytach magnetycznych na pięć minut, a następnie ostrożnie przenieś zawartość probówki do trzeciego zestawu czterech nowych 50-mililitrowych probówek. Następnie zbierz komórki przez odwirowanie i ponownie zawieś wszystkie cztery granulki komórek w łącznie 10 mililitrach sterylnego PBS do liczenia.

06:28

Prosta metoda cytometrii przepływowej do pomiaru wychwytu glukozy i ekspresji transportera glukozy dla subpopulacji monocytów we krwi pełnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:41

Kwantyfikacja transmigracji monocytów i tworzenia komórek piankowatych u osób z przewlekłymi stanami zapalnymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:12

Charakterystyka podzbiorów ludzkich monocytów za pomocą analizy cytometrii przepływu krwi pełnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:06

Negatywna selekcja immunomagnetyczna: metoda oczyszczania limfocytów B z komórek jednojądrzastych krwi obwodowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:05

Hodowla in vitro i różnicowanie pierwotnych monocytów do makrofagów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:46

Test in vitro do oceny immunomodulacyjnego wpływu monocytów na proliferację leukocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Model in vitro do badania heterogeniczności różnicowania i polaryzacji ludzkich makrofagów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:31

Wykrywanie oddziaływań nanocząstek fluorescencyjnych z pierwotnymi subpopulacjami komórek odpornościowych za pomocą cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:32

Izolacja ludzkich monocytów przez wirowanie z podwójnym gradientem i ich różnicowanie do makrofagów w workach do hodowli komórkowych pokrytych teflonem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:31

Charakterystyka ludzkich komórek dendrytycznych pochodzących z monocytów za pomocą obrazowania cytometrii przepływowej: porównanie dwóch protokołów izolacji monocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026