Różnicowanie indukowanych przez człowieka pluripotencjalnych komórek macierzystych w makrofagi

0 wyświetleń4:56 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dorosłe komórki somatyczne mogą być genetycznie przeprogramowane w celu uzyskania indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych, iPSC, które wykazują niezróżnicowane i proliferacyjne stany podobne do komórek macierzystych.

Aby rozróżnić ludzkie iPSC na makrofagi – białe krwinki, które fagocytozują patogeny i szczątki komórkowe – należy rozpocząć od płytki hodowlanej z niekomórkową powierzchnią adhezyjną

.

Dodaj pożywkę zawierającą czynniki wzrostu, białko morfogenetyczne kości, czynnik komórek macierzystych i czynnik wzrostu śródbłonka naczyniowego. Wysiewać iPSC i inkubować.

Nieprzywierająca powierzchnia zapobiega przyczepianiu się iPSC i utrzymuje komórki w zawiesinie, ułatwiając agregację w trójwymiarowe ciała zarodkowe, EB. Czynniki wzrostu inicjują różnicowanie iPSC w obrębie EB do komórek linii mezodermalnej.

Przenieść zróżnicowane EB do probówki wirówkowej. Pozwól im osiąść dzięki grawitacji. Ponownie zawiesić EB w świeżych pożywkach zawierających interleukinę-3, IL3 i czynnik stymulujący tworzenie kolonii makrofagów, CSF1. Umieść EB na pokrytej żelatyną płytce do hodowli komórkowej.

Żelatyna – białko macierzy zewnątrzkomórkowej – ułatwia przyłączanie EB. IL3 stymuluje EB do różnicowania się w hematopoetyczne komórki progenitorowe macierzyste, dając początek komórkom szpikowym. CSF1 wspomaga proliferację komórek szpikowych i ich różnicowanie w prekursory makrofagów, które są uwalniane i pozostają w zawiesinie w pożywce.

Zebrać komórki zawiesiny i odwirować. Ponownie zawiesić komórki w pożywce uzupełnionej CSF1.

Umieść komórki na niepowlekanych płytkach hodowlanych.

CSF1 indukuje końcowe różnicowanie prekursorów makrofagów w pełni funkcjonalne, przylegające dojrzałe makrofagi.

Aby rozpocząć proces różnicowania w dniu zero, dodaj 2,25 mililitra pożywki etapu 1 do dwóch dołków 6-dołkowej płytki o bardzo niskim mocowaniu. Następnie, w przypadku 180% zlewających się studzienek iPSC w płytce 6-dołkowej, zastąp pożywkę konserwacyjną 1,5 mililitra pożywki etapu 1. Wycinaj kolonie za pomocą nowego narzędzia do pasażowania komórek. Za pomocą pipety przenieś pocięte kolonie do dwóch dołków 6-dołkowej płytki o bardzo niskim nasadce.

W dniu 2 dostosuj stężenia cytokin, dodając 0,5 mililitra pożywki hESC-SFM do 6-dołkowej płytki zawierającej ciała zarodkowe drugiego dnia.

W dniu 4 pokryj cztery dołki 6-dołkowej płytki do hodowli tkankowej 0,1% żelatyny. Po inkubacji przez co najmniej 10 minut usuń żelatynę i dodaj 2,5 mililitra pożywki etapu 2.

Zbierz uformowane ciała zarodkowe z dwóch dołków 6-dołkowej płytki i umieść je w 50-mililitrowej probówce wirówkowej. Pozwól im osiąść na dnie rurki grawitacyjnie. Następnie ostrożnie odessać pożywkę z probówki i ponownie zawiesić ciała zarodkowe w 2 mililitrach pożywki etapu 2.

Przenieś od 10 do 15 ciał zarodkowych do studzienki pokrytej żelatyną, zawierającej 2,5 mililitra pożywki etapu 2 i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla. Przez dwa do trzech tygodni zmieniaj nośnik co trzy do czterech dni.

Poszycie EB ma kluczowe znaczenie. Posiadanie mniej niż 10 lub więcej niż 15 EB lub ich nierównomierne rozmieszczenie może prowadzić do niskiej wydajności makrofagów.

Po dwóch, trzech tygodniach ciała zarodkowe zaczynają uwalniać nieprzylegające komórki krwiotwórcze do zawiesiny. Za pomocą sitka o długości 40 mikrometrów zbierz te komórki do 50-mililitrowej probówki, a następnie uzupełnij pożywkę. Odwirować zawiesinę komórek krwiotwórczych o stężeniu 200 x g przez trzy minuty.

Ponownie zawiesić komórki krwiotwórcze w pożywce etapu 3. Następnie nanieś komórki o gęstości 0,2 x 106 na mililitr. Zmieniaj nośnik etapu 3 co pięć dni.

Po dziewięciu do 11 dniach makrofagi będą w pełni zróżnicowane i w pełni funkcjonalne.

06:21

Wytwarzanie in vitro pochodnych somitów z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:38

Wytwarzanie i ekspansja ludzkich kardiomiocytów z komórek jednojądrzastych krwi obwodowej pacjenta

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:19

Ludzkie komórki podobne do mikrogleju: różnicowanie z indukowanymi pluripotencjalnymi komórkami macierzystymi i test fagocytozy żywych komórek in vitro przy użyciu ludzkich synaptosomów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:05

Różnicowanie i polaryzacja komórek pochodzących z monocytów w komórki podobne do makrofagów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:03

Różnicowanie indukowanych przez człowieka pluripotencjalnych komórek macierzystych w komórki podobne do mikrogleju

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Model in vitro do badania heterogeniczności różnicowania i polaryzacji ludzkich makrofagów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:32

Izolacja ludzkich monocytów przez wirowanie z podwójnym gradientem i ich różnicowanie do makrofagów w workach do hodowli komórkowych pokrytych teflonem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:46

Posiew czynnika stymulującego tworzenie kolonii makrofagów Zróżnicowane ludzkie makrofagi pochodzące z monocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:05

Produkcja i charakterystyka ludzkich makrofagów z pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Różnicowanie indukowanych przez człowieka pluripotencjalnych komórek macierzystych do komórek podobnych do mikronaczyń śródbłonka mózgu o dojrzałym fenotypie immunologicznym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026