$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Plastry Peyera, PP, agregaty zorganizowanych tkanek limfatycznych w ścianie jelita cienkiego, zawierają komórki odpornościowe, w tym limfocyty B, limfocyty T, komórki dendrytyczne i makrofagi.
Aby wyizolować limfocyty z mysich PP, zacznij od myszy poddanej eutanazji. Naciąć ścianę brzucha, odsłaniając jamę otrzewnej. Zlokalizuj jelito ślepe. Wypreparuj połączenie krętniczo-kątnicze, aby oddzielić jelito ślepe od jelita cienkiego.
Wyciąć krezkę i naciąć jelito cienkie w dwunastnicy, aby usunąć jelito cienkie z jamy otrzewnej. Umieść jelito cienkie w wielodołkowej płytce zawierającej schłodzone podłoże i spłucz w celu usunięcia zanieczyszczeń.
Ułóż jelito cienkie stroną krezkową skierowaną w dół i zwilż pożywką, aby utrzymać nawodnienie tkanek. Zidentyfikuj PP — białe wielopłatkowe agregaty po stronie przeciwkrezkowej ściany jelita.
Ostrożnie wyciąć PPs, wykluczając otaczającą tkankę jelitową. Przenieść do probówki zawierającej podłoże. Wysiadywać w ciągłym mieszaniu. Ten etap mieszania odrywa śluz, resztki komórek i wszelkie kał od PP, poprawiając w ten sposób regenerację limfocytów PP.
Następnie przenieś tkankę do sitka komórkowego o odpowiednim rozmiarze oczek. Delikatnie rozerwij PP i uwolnij komórki. Przepłukać pożywką przez sitko, aby uzyskać zawiesinę limfocytów jednokomórkowych. Odwirować zawiesinę w niskiej temperaturze, aby utrzymać stabilność komórki.
Ponownie zawiesić limfocyty w pożywce i użyć do dalszej analizy.
Zacznij od umieszczenia myszy w pozycji leżącej na plecach i wysterylizowania brzucha 70% etanolem. Wykonaj nacięcie brzucha w linii środkowej przez skórę i otrzewną od łona do klatki piersiowej, aby otworzyć jamę otrzewnej i zlokalizować jelito ślepe i połączenie krętniczo-kątnicze.
Wykonaj jak najbardziej dystalne cięcie na skrzyżowaniu, aby oddzielić jelito cienkie od jelita ślepego, i przetnij krezkę nożyczkami, aby ostrożnie usunąć całe jelito cienkie aż do zwieracza odźwiernika.
Odetnij połączenie między odźwiernikiem a dwunastnicą, aby całkowicie oderwać jelito cienkie od jamy brzusznej, a następnie umieść wyizolowane jelito cienkie w jednym dołku sześciodołkowej płytki zawierającej zimne podłoże RPMI, uzupełnione 10% płodową surowicą bydlęcą lub FBS na lodzie. Następnie delikatnie mieszaj tkanki ręcznie, aż wszystkie segmenty zostaną zanurzone w zimnym podłożu.
Kiedy wszystkie jelita zostaną pobrane, użyj kleszczy, aby chwycić tłuszcz krezkowy z jednej krawędzi jelita i umieść próbkę - krezkową stroną do dołu - na ręczniku papierowym. Zwilż cały segment jelita RPMI plus 10% FBS, aby uniknąć odwodnienia tkanek i lepkości, i zlokalizuj plamy Peyera, które pojawiają się jako białe, wielopłatkowe agregaty o kształcie przypominającym kalafior po stronie antykrezkowej ściany jelita.
Aby zebrać plastry Peyera, użyj zakrzywionych nożyczek chirurgicznych z krzywą skierowaną do góry, aby delikatnie wyciąć każdy plaster z jego dystalnych i proksymalnych granic, uważając, aby wykluczyć otaczającą tkankę jelitową, i umieść łaty Peyera w indywidualnych dołkach 12-dołkowej płytki zawierającej lodowaty RPMI plus 10% FBS, na lodzie, podczas ich zbierania.
Po pobraniu wszystkich plastrów użyj nożyczek, aby przeciąć końcówkę 1-mililitrowej końcówki mikropipety, tak aby średnica była wystarczająco duża, aby zassać poszczególne plastry Peyera, i przenieś plastry Peyera do 150-mililitrowej stożkowej rurki na mysz, zawierającej 25 mililitrów 37 stopni Celsjusza RPMI plus 10% FBS.
Następnie umieść rurki w wytrząsarce orbitalnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza z ciągłym mieszaniem przy 125 do 150 obr./min przez 10 minut. Pod koniec mieszania przenieś plastry Peyera na sitko o średnicy 140 mikrometrów na mysz i użyj gumowej końcówki 110-mililitrowego tłoka strzykawki na zwierzę, aby delikatnie przebić łaty Peyera przez siatkę do pojedynczych 50-mililitrowych stożkowych probówek.
Przepłucz sitka 15 do 20 mililitrami zimnego RPMI plus 10% FBS i zbierz komórki przez odwirowanie. Po ostrożnym odrzuceniu supernatantu, ponownie zawiesić komórki w stężeniu około 1 x 107 komórek na mililitr RPMI plus 10% FBS do liczenia. Następnie przenieś 2 do 2,5 x 106 komórek na 200 mikrolitrów pożywki do każdej studzienki 96-dołkowej okrągłej płytki dolnej i osadzaj komórki przez odwirowanie.