Izolacja limfocytów z mysiego plastra Peyera

0 wyświetleń6:02 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Plastry Peyera, PP, agregaty zorganizowanych tkanek limfatycznych w ścianie jelita cienkiego, zawierają komórki odpornościowe, w tym limfocyty B, limfocyty T, komórki dendrytyczne i makrofagi.

Aby wyizolować limfocyty z mysich PP, zacznij od myszy poddanej eutanazji. Naciąć ścianę brzucha, odsłaniając jamę otrzewnej. Zlokalizuj jelito ślepe. Wypreparuj połączenie krętniczo-kątnicze, aby oddzielić jelito ślepe od jelita cienkiego.

Wyciąć krezkę i naciąć jelito cienkie w dwunastnicy, aby usunąć jelito cienkie z jamy otrzewnej. Umieść jelito cienkie w wielodołkowej płytce zawierającej schłodzone podłoże i spłucz w celu usunięcia zanieczyszczeń.

Ułóż jelito cienkie stroną krezkową skierowaną w dół i zwilż pożywką, aby utrzymać nawodnienie tkanek. Zidentyfikuj PP — białe wielopłatkowe agregaty po stronie przeciwkrezkowej ściany jelita.

Ostrożnie wyciąć PPs, wykluczając otaczającą tkankę jelitową. Przenieść do probówki zawierającej podłoże. Wysiadywać w ciągłym mieszaniu. Ten etap mieszania odrywa śluz, resztki komórek i wszelkie kał od PP, poprawiając w ten sposób regenerację limfocytów PP.

Następnie przenieś tkankę do sitka komórkowego o odpowiednim rozmiarze oczek. Delikatnie rozerwij PP i uwolnij komórki. Przepłukać pożywką przez sitko, aby uzyskać zawiesinę limfocytów jednokomórkowych. Odwirować zawiesinę w niskiej temperaturze, aby utrzymać stabilność komórki.

Ponownie zawiesić limfocyty w pożywce i użyć do dalszej analizy.

Zacznij od umieszczenia myszy w pozycji leżącej na plecach i wysterylizowania brzucha 70% etanolem. Wykonaj nacięcie brzucha w linii środkowej przez skórę i otrzewną od łona do klatki piersiowej, aby otworzyć jamę otrzewnej i zlokalizować jelito ślepe i połączenie krętniczo-kątnicze.

Wykonaj jak najbardziej dystalne cięcie na skrzyżowaniu, aby oddzielić jelito cienkie od jelita ślepego, i przetnij krezkę nożyczkami, aby ostrożnie usunąć całe jelito cienkie aż do zwieracza odźwiernika.

Odetnij połączenie między odźwiernikiem a dwunastnicą, aby całkowicie oderwać jelito cienkie od jamy brzusznej, a następnie umieść wyizolowane jelito cienkie w jednym dołku sześciodołkowej płytki zawierającej zimne podłoże RPMI, uzupełnione 10% płodową surowicą bydlęcą lub FBS na lodzie. Następnie delikatnie mieszaj tkanki ręcznie, aż wszystkie segmenty zostaną zanurzone w zimnym podłożu.

Kiedy wszystkie jelita zostaną pobrane, użyj kleszczy, aby chwycić tłuszcz krezkowy z jednej krawędzi jelita i umieść próbkę - krezkową stroną do dołu - na ręczniku papierowym. Zwilż cały segment jelita RPMI plus 10% FBS, aby uniknąć odwodnienia tkanek i lepkości, i zlokalizuj plamy Peyera, które pojawiają się jako białe, wielopłatkowe agregaty o kształcie przypominającym kalafior po stronie antykrezkowej ściany jelita.

Aby zebrać plastry Peyera, użyj zakrzywionych nożyczek chirurgicznych z krzywą skierowaną do góry, aby delikatnie wyciąć każdy plaster z jego dystalnych i proksymalnych granic, uważając, aby wykluczyć otaczającą tkankę jelitową, i umieść łaty Peyera w indywidualnych dołkach 12-dołkowej płytki zawierającej lodowaty RPMI plus 10% FBS, na lodzie, podczas ich zbierania.

Po pobraniu wszystkich plastrów użyj nożyczek, aby przeciąć końcówkę 1-mililitrowej końcówki mikropipety, tak aby średnica była wystarczająco duża, aby zassać poszczególne plastry Peyera, i przenieś plastry Peyera do 150-mililitrowej stożkowej rurki na mysz, zawierającej 25 mililitrów 37 stopni Celsjusza RPMI plus 10% FBS.

Następnie umieść rurki w wytrząsarce orbitalnej w temperaturze 37 stopni Celsjusza z ciągłym mieszaniem przy 125 do 150 obr./min przez 10 minut. Pod koniec mieszania przenieś plastry Peyera na sitko o średnicy 140 mikrometrów na mysz i użyj gumowej końcówki 110-mililitrowego tłoka strzykawki na zwierzę, aby delikatnie przebić łaty Peyera przez siatkę do pojedynczych 50-mililitrowych stożkowych probówek.

Przepłucz sitka 15 do 20 mililitrami zimnego RPMI plus 10% FBS i zbierz komórki przez odwirowanie. Po ostrożnym odrzuceniu supernatantu, ponownie zawiesić komórki w stężeniu około 1 x 107 komórek na mililitr RPMI plus 10% FBS do liczenia. Następnie przenieś 2 do 2,5 x 106 komórek na 200 mikrolitrów pożywki do każdej studzienki 96-dołkowej okrągłej płytki dolnej i osadzaj komórki przez odwirowanie.

08:08

Izolacja i aktywacja mysich limfocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:52

Wszczepienie guza w mysim modelu ksenoprzeszczepu chłoniaka z ludzkich komórek płaszcza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:28

Izolowanie limfocytów od układu odpornościowego myszy w jelicie cienkim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:47

Izolacja limfocytów T CD4+ z węzłów chłonnych myszy z wykorzystaniem oczyszczania metodą Miltenyi MACS

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:59

Zastosowanie testu pętli jelitowej z podwiązaną plamką Peyer’a u myszy do oceny wychwytu bakterii przez komórki M

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:46

Izolacja limfocytów z błony śluzowej dróg rodnych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:49

Izolowanie i barwienie immunologiczne limfocytów i komórek dendrytycznych z mysich plastrów Peyera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:14

Izolacja i charakterystyka cytometryczna mysich limfocytów jelita cienkiego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:25

Odkrywanie kluczowych graczy odporności humoralnej: zaawansowany i zoptymalizowany protokół izolacji limfocytów z plastrów mysich Peyera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:35

Analiza hipermutacji somatycznej w intronie JH4 komórek B centrum rozrodczego z mysich plastrów Peyera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026