$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Specyficzne czynniki wzrostu i cytokiny regulują różnicowanie monocytów – wrodzonych komórek układu odpornościowego – w prozapalne makrofagi M1 lub przeciwzapalne M2.
Aby zbadać różnicowanie monocytów, należy wysiać komórki jednojądrzaste krwi obwodowej na plastikowej płytce wielodołkowej zawierającej odpowiednią pożywkę. Inkubować, aby monocyty mogły przyczepić się do powierzchni płytki, podczas gdy nieprzylegające komórki jednojądrzaste pozostają zawieszone. Usuń nieprzylegające komórki.
Dodać pożywkę zawierającą czynnik wzrostu czynnik stymulujący tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów, GM-CSF, do jednego zestawu studzienek, a pożywkę zawierającą czynnik stymulujący tworzenie kolonii makrofagów, M-CSF, do drugiej.
GM-CSF wiąże się ze swoim heterodimerycznym receptorem na powierzchni komórki monocytów, prowadząc do ekspansji i różnicowania monocytów do makrofagów podobnych do M1, w połączeniu z uwalnianiem cytokin prozapalnych.
M-CSF wiąże się ze swoim receptorem homodimerycznym na powierzchni komórki monocytów, wywołując proliferację monocytów, różnicowanie do makrofagów podobnych do M2 i uwalnianie cytokin przeciwzapalnych.
Inkubuj makrofagi podobne do M1 z lipopolisacharydem, LPS i cytokiną Interferon-gamma, IFN-γ.
Leczenie LPS i IFN-γ daje w pełni spolaryzowane i dojrzałe prozapalne makrofagi M1 ze zwiększonym uwalnianiem cytokin prozapalnych i reaktywnych form tlenu.
I odwrotnie, inkubacja z interleukiną-4 stymuluje dojrzewanie i polaryzację makrofagów podobnych do M2 do przeciwzapalnego fenotypu M2, wraz ze zwiększoną produkcją cytokin przeciwzapalnych.
Wizualizuj makrofagi pod mikroskopem świetlnym. Makrofagi M1 wydają się wydłużone i rozciągnięte, podczas gdy makrofagi M2 wykazują zaokrągloną morfologię.
Aby zainicjować różnicowanie makrofagów, rozcieńczyć komórki do 5 x 106 komórek na mililitr stężenia pożywki bez surowicy i zasiać 2 mililitry komórek w pojedynczych dołkach 6-dołkowej płytki. Umieść płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych na dwie do trzech godzin, aby komórki przylgnęły do dna studzienki.
Pod koniec inkubacji przemyć studzienki trzykrotnie 1 mililitrem pożywki wolnej od surowicy na przemycie i dodać 2 mililitry kompletnej pożywki RPMI uzupełnionej 50 nanogramami na mililitr GM-CSF lub 50 nanogramami na mililitr M-CSF, dla różnicowania M1 lub M2, odpowiednio do każdej studzienki przylegających komórek.
Trzy dni po rozpoczęciu polaryzacji ostrożnie zastąp 1 mililitr supernatantu z każdej studzienki 1 mililitrem świeżej kompletnej pożywki uzupełnionej odpowiednimi czynnikami wzrostu.
W 6 dniu hodowli dodać 50 nanogramów na mililitr interferonu gamma i 10 nanogramów na mililitr LPS do studzienek poddanych działaniu GM-CSF i 20 nanogramów na mililitr IL4 do studzienek poddanych działaniu M-CSF.
Regularnie sprawdzaj morfologię kultur komórkowych pochodzących z monocytów za pomocą mikroskopii świetlnej, aby upewnić się, że mniejsze monocyty różnicują się w większe komórki podobne do makrofagów.