JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 5:45 min • July 8th, 2025
Limfocyty T regulatorowe lub Treg to wyspecjalizowana subpopulacja limfocytów T, która wywiera działanie immunosupresyjne, pośrednicząc w homeostazie układu odpornościowego. Tregi wyrażają markery powierzchniowe komórek CD4, CD25 i neuropilinę 1, Nrp1 oraz jądrowe czynniki transkrypcyjne forkhead box P3, Foxp3 i Helios.
Aby wyizolować limfocyty Treg z węzłów chłonnych drenujących trzustkę myszy lub PDLN, umieść metalową siatkę na stożkowej rurce. Umieść PDLN na siatce i zmiel tkankę, aby mechanicznie ją zdysocjować. Dodać odpowiednie podłoże na siatkę, spłukując komórki do probówki.
Wirować, usuwając martwe komórki i resztki komórkowe. Ponownie zawiesić żywe komórki w pożywce. Przepuść komórki przez nasadkę sitka umieszczoną w probówce z okrągłym dnem, aby uzyskać jednorodną zawiesinę jednokomórkową, eliminując wszelkie pozostałe grudki komórek.
Dodaj przeciwciała anty-CD4, anty-CD25 i anty-Nrp1 sprzężone z fluorochromem. Przeciwciała anty-CD4 i anty-CD25 wiążą się z odpowiednimi antygenami na powierzchni komórki na limfocytach Treg. Jednocześnie anty-Nrp1 wiąże się z receptorami Nrp1.
Potraktuj komórki odpowiednim buforem utrwalającym przepuszczalność, utrwalającym komórki i przenikającym błony komórkowe i jądrowe. Dodaj przeciwciała sprzężone z fluorochromem skierowane przeciwko Foxp3 i Helios.
Przepuszczalne błony umożliwiają przeciwciałom wnikanie do komórek i wiązanie się z odpowiednimi celami wewnątrzjądrowymi. Przeanalizuj komórki za pomocą cytometrii przepływowej.
Tregi charakteryzują się dodatnią ekspresją CD4, CD25 i Nrp1 na powierzchni komórki, wraz z jądrowymi czynnikami transkrypcyjnymi Foxp3 i Helios.
Najpierw umieść 15-mililitrową stożkową rurkę w stojaku. Umieść sterylną metalową siatkę o grubości 250 mikrometrów na probówce. Opłucz siatkę 1 mililitrem RPMI. Następnie przenieś węzły chłonne na metalową siatkę i użyj pęsety, aby zmielić je przez siatkę. Nałóż 1 mililitr RPMI na siatkę, aby spłukać komórki do tuby. Powtórz ten proces przenoszenia i mielenia węzłów chłonnych trzy razy dla każdej próbki, a następnie usuń siatkę.
Odwirować probówki o masie 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Wyrzuć supernatant i ponownie zawieś ogniwa w około 5 mililitrach RPMI, a następnie napełnij probówki RPMI. Powtórz ten proces od odwirowania próbek do jednokrotnego napełnienia probówki RPMI.
Ponownie odwirować probówki w temperaturze 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Wyrzuć supernatant i ponownie zawieś osad ogniwa w 2 mililitrach RPMI. Przenieś 2 mililitry zawiesiny komórek do 5-mililitrowych probówek okrągłodennych z nakrętkami sitka komórkowego.
Najpierw odwirować zawiesinę komórkową z próbek PDLN w temperaturze 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Odrzucić supernatant. Wybarwić komórki przeciwciałami powierzchniowymi, jak opisano w protokole tekstowym, i inkubować probówki na lodzie przez 40 minut.
Następnie dodaj 200 mikrolitrów buforu FACS do każdej probówki. Wirować przy 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut i wyrzucić supernatant. Powtórz ten proces — dodając bufor, odwirowując i odrzucając supernatant jeden raz. Ponownie zawiesić osad komórkowy w 500 mikrolitrach buforu utrwalającego przepuszczalność, aby utrwalić i przepuszczalność komórek.
Przełóż probówki do lodówki w temperaturze 4 stopni Celsjusza na noc. Następnego dnia odwirować zawiesinę komórkową z próbek PDLN o sile 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Wyrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy w 500 mikrolitrach buforu do przemywania przepuszczalności. Ponownie odwirować komórki w temperaturze 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut, a następnie odrzucić supernatant.
Wybarwić komórki przeciwciałami wewnątrzkomórkowymi, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Inkubuj probówki na lodzie przez 1 godzinę. Następnie dodaj 500 mikrolitrów buforu do przemywania przepuszczalności do każdej probówki. Wirować przy 433 x g i w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Wyrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad w 500 mikrolitrach permeabilizacji buforu do płukania.
Odwirować jeszcze raz w temperaturze 433 x g w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy w 300 mikrolitrach buforu FACS. Następnie przeanalizuj komórki na cytometrze przepływowym, jak opisano w protokole tekstowym.
Niniejszy artykuł omawia izolację i charakterystykę regulatorowych limfocytów T (Tregs) z węzłów chłonnych drenujących trzustkę myszy. Limfocyty Tregs odgrywają kluczową rolę w utrzymaniu homeostazy układu odpornościowego poprzez swoje działanie immunosupresyjne.
Niniejszy protokół umożliwia precyzyjną izolację i charakterystykę fenotypową subpopulacji regulatorowych limfocytów T z mysich węzłów chłonnych drenujących trzustkę, co wspiera walidację celów w procesie odkrywania leków immunomodulujących. Poprzez definicję populacji Treg na podstawie markerów powierzchniowych i wewnątrzkomórkowych, metoda ta dostarcza istotnego w kontekście choroby systemu do mechanistycznej redukcji ryzyka w przypadku terapii ukierunkowanych na tolerancję immunologiczną. Metoda ta zwiększa pewność predykcyjną w modelach przedklinicznych, dostarczając ilościowych i powtarzalnych wyników cytometrii przepływowej w zakresie oceny zaangażowania celu oraz oceny funkcjonalnej.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania leków, od walidacji celu po ocenę przedkliniczną, oferując wiarygodne podejście do oceny wpływu związków immunomodulujących na populacje Treg.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026