$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Aby wygenerować emigrantów grasicy pochodzących z iPSC, iTE z niedojrzałych limfocytów T w systemie hodowli narządów grasicy 3D, należy pobrać deoksyguanozynę, mysie płaty grasicy leczone dGUO w odpowiednich podłożach.
dGUO dostaje się do środowiska grasicy i niszczy endogenne limfocyty grasicy, zapobiegając ich interferencji z niedojrzałymi limfocytami T pochodzącymi z iPSC podczas kohodowli.
Wykonaj głębokie nacięcie w środku każdego płata grasicy. Przenieś płaty do świeżej płytki hodowlanej zawierającej pożywkę uzupełnioną czynnikami wzrostu, czynnikiem komórek macierzystych, ligandem FLT3 i interleukiną-7.
Odpipetować pożywkę zawierającą płat grasicy do dołków płytki hodowlanej 3D. Dodaj niedojrzałe limfocyty T pochodzące z iPSC. Inkubować. Limfocyty T migrują do płatów grasicy przez nacięcie.
W środowisku grasicy czynniki wzrostu, ligand FLT3 i IL-7, wiążą się ze swoimi odpowiednimi receptorami na niedojrzałych limfocytach T, co prowadzi do aktywacji czynników transkrypcyjnych i ekspresji określonych genów.
W konsekwencji niedojrzałe limfocyty T przechodzą szereg zmian i nabierają specyficznych cech, ostatecznie dojrzewając do limfocytów T CD8αβ +, które na swojej powierzchni wyrażają cząsteczki CD8, receptory limfocytów T i cząsteczki MHC klasy I.
Usuń niedojrzałe limfocyty T, którym nie udało się migrować do płatów.
Dojrzałe iTE migrują z płatów grasicy, które można zwizualizować jako wzór przypominający halo otaczający płaty pod mikroskopem świetlnym.
W 7 dniu kuracji dGUO wyjmij cztery nowe 10-centymetrowe szalki. Napełnij każde naczynie mililitrami kompletnego podłoża. Przenieś wszystkie membrany nitrocelulozowe z płatkami grasicy do jednego 10-centymetrowego naczynia. Za pomocą kleszczy odłącz poszczególne płaty od membrany, umożliwiając ich zanurzenie w pożywce.
Inkubuj płaty przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Następnie przenieś płaty grasicy do nowej 10-centymetrowej pożywki z kompletną pożywką i inkubuj przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Powtórz ten transfer i inkubację dodatkowo dwa razy.
Za pomocą kleszczy przymocuj płaty grasicy do naczynia, drugą ręką wykonaj nacięcie o głębokości od 100 do 200 mikrometrów pośrodku i przedłużając połowę średnicy płata, aby ułatwić migrację progenitorów limfocytów T do płata.
Przenieś płatki grasicy do nowego 10-centymetrowego naczynia wypełnionego kompletną pożywką różnicującą. Jeśli używasz płytek hodowlanych 3D z siatkami dolnego i górnego poziomu, wypełnij obie siatki sterylnym PBS, aby zapobiec parowaniu i wysuszaniu wiszących kropli.
Następnie przenieś 30 mikrolitrów kompletnej pożywki zawierającej jeden płat grasicy poddany działaniu dGUO do każdej studzienki płytki hodowlanej 3D. Zbierz nieprzylegające komórki linii T z kohodowli OP9 / DLL1 i ponownie zawiesić komórki w gęstości od 2,000 do 5,000 komórek linii limfocytów T na 20 mikrolitrów pożywki. Dodaj 20 mikrolitrów zawiesiny komórek linii T do każdego płata grasicy na płytce hodowlanej 3D. Inkubować przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla.
Następnego dnia ustaw pipetę P200 na 30 mikrolitrów. Kilkakrotnie pipetować pożywkę w każdej studzience w górę i w dół, aby usunąć wszystkie komórki otaczające płaty grasicy. Następnie odessaj pożywkę z każdej studzienki i zastąp ją 30 mikrolitrami kompletnej pożywki. Powtórz ten proces - pipetowanie, wyjmowanie i wymianę pożywki - 5 do 7 razy, aby usunąć wszelkie dodatkowe niedojrzałe limfocyty T, które nie migrują do płatów.
Kontynuuj inkubację płatów, upewniając się, że codziennie zmieniasz od 25 do 30 mikrolitrów pożywki. W 4 lub 5 dniu użyj mikroskopii świetlnej, aby potwierdzić tworzenie się wokół płatów aureoli imigrantów grasicy pochodzących z iPSC. Codziennie zbieraj iTE, pipetując pożywki bez przerywania pracy płatka. Zmieniaj nośniki codziennie i kontynuuj zbieranie do około 12 dni.
Pobrane iTE są gotowe do użycia do analizy molekularnej lub eksperymentów transplantacyjnych in vivo.