Rozpoznawanie markerów CD ludzkich komórek zabójczych indukowanych cytokinami za pomocą cytometrii przepływowej

0 wyświetleń5:35 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Komórki CIK indukowane cytokinami to heterogeniczne populacje komórek odpornościowych generowane ex vivo z hodowli komórek jednojądrzastych krwi obwodowej (PBMC) stymulowanych specyficznymi cytokinami i przeciwciałami monoklonalnymi. Komórki CIK obejmują populacje komórek, w tym komórki NK-T CD3 + CD56 +, limfocyty T CD3 + CD56 i komórki NK CD3-CD56 +.

Aby określić proporcję komórek CIK, zacznij od probówek zawierających zawiesinę komórek CIK pochodzącą z PBMC. Dodaj przeciwciała anty-CD3 i anty-CD56 sprzężone z różnymi fluoroforami i ich mieszaninę do wyznaczonych probówek. Dodaj przeciwciała kontrolne izotypu sprzężone z podobnymi fluoroforami jako przeciwciała specyficzne do innych probówek.

Znakowane fluorescencyjnie przeciwciała anty-CD3 i anty-CD56 rozpoznają i wiążą się z CD3 i CD56 eksprymowanymi odpowiednio w populacjach komórek CIK. Przeciwciała kontrolne izotypu nie mają swoistości dla antygenu docelowego, co ułatwia pomiary niespecyficznego sygnału tła.

Pipetuj komórki do okrągłodennych probówek z nasadkami sitkowymi, które pomagają w usuwaniu agregatów komórkowych. Załaduj probówki do karuzeli cytometru przepływowego. Podczas biegu każda komórka przechodzi przez kanał i napotyka wiązki laserowe, rozpraszając światło.

Jeden detektor mierzy natężenie światła rozproszonego do przodu, wskazujące na rozmiar komórki; drugi mierzy natężenie światła rozproszonego z boku prostopadle do wiązki laserowej, co sugeruje ziarnistość komórki. Razem te informacje pomagają zidentyfikować populację komórek odpornościowych.

Jednocześnie wiązki laserowe o określonych długościach fal wzbudzają przeciwciała sprzężone z fluoroforem na komórkach, powodując emisję sygnału fluorescencyjnego, który jest wykrywany.

Analiza określonych intensywności fluorescencji na komórkach określa proporcję subpopulacji komórek CIK.

Rozpocznij tę procedurę od przygotowania komórek CIK, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Następnie umyj komórki CIK 10 mililitrami sterylnego PBS. Wirować przez 10 minut w temperaturze 300 razy g i 18 do 20 stopni Celsjusza. Odessać supernatant i ponownie zawiesić komórki za pomocą 5 mililitrów PBS. Policz liczbę komórek i przetestuj żywotność komórek za pomocą testu wykluczania błękitu trypanowego.

Podzielić komórki CIK na sześć sterylnych probówek o pojemności 1,5 mililitra o gęstości około 0,5 do 1 miliona komórek na mililitr PBS. Oznacz komórki i potraktuj je zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Delikatnie wymieszaj komórki CIK z przeciwciałami, delikatnie pipetując w górę iw dół co najmniej trzy razy za pomocą sterylnej pipety o pojemności 1 mililitra. Inkubować komórki przez 15 minut w temperaturze pokojowej w ciemności.

Wirować probówki przez 10 minut w temperaturze 300 razy g i temperaturze od 18 do 20 stopni Celsjusza. Po odwirowaniu odessać supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy z 1 mililitrem PBS. Następnie delikatnie odpipetuj komórki w górę iw dół co najmniej trzy razy za pomocą sterylnej pipety o pojemności 1 mililitra. Przenieś zawiesinę komórek do sterylnej 5-mililitrowej probówki z polistyrenu o okrągłym dnie z nakrętką z sitkiem do komórek, delikatnie pipetując przez nasadkę. Następnie umieść rurki na karuzeli w kolejności.

Otwórz oprogramowanie do analizy cytometrii przepływowej i utwórz folder eksperymentalny. Następnie kliknij przycisk "Nowa próbka", aby dodać próbkę i probówkę do eksperymentu. Nazwij probówki zgodnie z listą w protokole tekstowym.

Aby utworzyć system bramkowania rozproszonego dla populacji komórek CIK, najpierw wybierz rurkę 1 i kliknij przycisk Wykres punktowy, aby utworzyć wykres FSC-A/SSC-A. Narysuj prostokątną bramkę nad całą populacją komórek z progiem FSC-A większym niż 5,000, aby wykluczyć resztki komórek.

Wybierz parametr FSC-A/FSC-H dla nowego wykresu punktowego i narysuj bramkę wielokątną wokół wszystkich pojedynczych komórek. Wybierz parametr liczby w stosunku do sprzężonego z FITC (CD3) i parametru liczby w porównaniu z sprzężonym APC (CD56) dla nowego wykresu histogramu. Wybierz parametr sprzężony z FITC (CD3) i sprzężony z APC (CD56) dla nowego wykresu kropkowego i narysuj bramkę czterokwadrantową, aby zdefiniować cztery subpopulacje.

Rejestruj dane z 20 000 pojedynczych komórek w każdej próbce. Kliknij przycisk "Załaduj próbkę", aby najpierw przeanalizować ślepą próbkę kontrolną. Zidentyfikuj całą populację komórek CIK przy użyciu parametrów kanału CD56 i CD3. Otwórz pliki zawierające wartości statystyczne poszczególnych próbek, aby przeanalizować populacje komórek CIK i wydrukuj je ponownie w plikach analizy.

08:32

Wzbogacenie i charakterystyka mikrośrodowisk immunologicznych i nieimmunologicznych guza w ustalonych podskórnych guzach myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:57

Wykrywanie w czasie rzeczywistym apoptozy komórek nowotworowych in vitro indukowanej przez limfocyty T CD8 + w celu zbadania funkcji immunosupresyjnych komórek szpikowych naciekających nowotwór

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:51

Wytwarzanie limfocytów T z chimerycznym receptorem antygenowym (CAR) do immunoterapii adoptywnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:42

Wizualizacja antygenowo swoistych limfocytów T CD4+ z wykorzystaniem tetramerów MHC klasy II

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:27

Test in vitro do badania zdolności cytotoksycznych komórek zabójczych indukowanych cytokinami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:57

Test cytometrii przepływowej w celu identyfikacji podzbiorów komórek odpornościowych w komórkach jednojądrzastych krwi obwodowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:14

Test cytometrii przepływowej opartej na komórkach do pomiaru aktywności cytotoksycznej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:14

Analiza cytometryczna przepływu aktywności litycznej komórek NK w ludzkiej krwi pełnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:08

Test cytotoksyczności oparty na cytometrii przepływowej do oceny aktywności ludzkich komórek NK

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:39

Izolacja limfocytów T CD4 + i analiza podzbiorów komórek krążących komórek T-pęcherzyków obojętnych (cTfh) z krwi obwodowej przy użyciu 6-kolorowej cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026