Wzbogacanie i ekspansja limfocytów T CD8+ specyficznych dla antygenu

0 wyświetleń5:41 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Maceruj śledzionę i węzły chłonne myszy na sitku do komórek. Przepłukać sitko odpowiednim buforem w celu zebrania splenocytów i limfocytów.

Inkubuj komórki za pomocą biotynylowanego koktajlu przeciwciał i magnetycznych mikrogranulek antybiotyny, które wiążą się z komórkami innymi niż CD8+.

Przepuść zawiesinę komórek przez kolumnę magnetyczną. Dzięki sile magnetycznej komórki nie-CD8 + związane z kulkami wiążą się ze ścianą kolumny, podczas gdy limfocyty T CD8 + wymywają się.

Inkubuj elucjowane komórki ze sztucznymi komórkami prezentującymi antygen, aAPC. Są to nanocząstki magnetyczne funkcjonalizowane białkiem fuzyjnym głównego kompleksu zgodności tkankowej i immunoglobuliny obciążonym antygenem, MHC-Ig i przeciwciałem anty-CD28.

Naładowane antygenem MHC-Ig wiążą się z odrębnymi receptorami na specyficznych dla antygenu limfocytach T CD8 +. Przeciwciała anty-CD28 oddziałują z receptorami CD28 limfocytów T, inicjując aktywację limfocytów T.

Umieść probówkę zawierającą nanocząstki magnetyczne i mieszaninę komórek na stojaku magnetycznym. Limfocyty T CD8 + związane z aAPC są przyciągane do pola magnetycznego, podczas gdy niespecyficzne limfocyty T CD8 + pozostają zawieszone. Usunąć supernatant.

Wyjmij rurkę ze stojaka magnetycznego. Ponownie zawiesić komórki związane z aAPC w pożywce zawierającej czynnik wzrostu limfocytów T. Wysadź je na płytce wielodołkowej.

Czynniki wzrostu indukują ekspansję limfocytów T CD8 + specyficznych dla antygenu

.

Aby wyizolować specyficzne dla antygenu limfocyty T CD8-dodatnie, maceruj śledziony i węzły chłonne od myszy C57Black / 6j typu dzikiego przez sterylne sitko do komórek o długości 70 mikrometrów z częstym płukaniem PBS i użyj bezdotykowego zestawu do izolacji limfocytów T CD8-dodatnich, zgodnie z instrukcjami producenta, w celu wyeliminowania limfocytów T nie-CD8-dodatnich.

Po zliczeniu zebrać wyizolowane limfocyty T CD8-dodatnie przez odwirowanie i ponownie zawiesić osad w 100 mikrolitrach PBS, uzupełnionych 0,5% albuminą surowicy bydlęcej i 2-milimolowym EDTA.

Następnie inkubuj komórki z nanocząsteczkami sztucznych komórek prezentujących antygen tak, aby na 1 x 10 6 wyizolowanych limfocytów T CD8-dodatnich przypadały 1 x10 11 wypełnionych peptydami MHC-Ig w sterylnej 5-mililitrowej probówce okrągłodennej z polistyrenu przez 1 godzinę w temperaturze 4 stopni Celsjusza z ciągłym mieszaniem.

Pod koniec inkubacji przemyć zawiesinę komórek nanocząstek trzykrotnie na stojaku magnetycznym, jak pokazano, ponownie zawieszając sztuczne komórki prezentujące antygen i wzbogacone limfocyty T CD8-dodatnie w 500 mikrolitrach świeżej pożywki z 1% czynnikiem wzrostu limfocytów T, po ostatnim płukaniu.

Aby uzyskać maksymalną regenerację komórek, bardzo ważne jest pozostawienie cząstek w komórkach na kolumnie magnetycznej na co najmniej 2 minuty i ostrożne zasysanie buforu bez zakłócania cząstek i komórek poddanych działaniu pola magnetycznego.

Po zliczeniu wysiewaj 2,5 x 105 wzbogaconych limfocytów T CD8-dodatnich i mieszaniny cząstek magnetycznych na 160 mikrolitrów uzupełnionej pożywki plus 1% TCGF w 96-dołkowej płytce z dnem w kształcie litery U. Trzeciego dnia nakarm komórki 80 mikrolitrami uzupełnionej pożywki z 2% czynnikiem wzrostu limfocytów T na studzienkę i zwróć płytkę do inkubatora hodowli komórkowych na kolejne cztery dni.

Siódmego dnia zbierz stymulowane komórki do 5-mililitrowej probówki z okrągłym dnem w celu zliczenia i zbierz komórki przez odwirowanie. Zawiesić osad w 0,5 mililitra PBS uzupełnionym 0,05% azydkiem sodu i 2% płodową surowicą bydlęcą do liczenia, a następnie podwielokrotność 5 x 104 do 5 x 105 komórek do nowych 5-mililitrowych probówek z okrągłym dnem do barwienia specyficznego dla antygenu.

Oznaczyć odpowiednie probówki biotynylowanym MHC-Ig i anty-mysim CD8a przez 1 godzinę w temperaturze 4 stopni Celsjusza, a następnie przepłukać wirówką w świeżym PBS, aby usunąć nadmiar biotynylowanej immunoglobuliny. Następnie wybarwić próbki odpowiednim przeciwciałem drugorzędowym sprzężonym ze streptawidyną i odpowiednim żywym/martwym, możliwym do naprawienia barwieniem martwych komórek przez 15 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza i odczytać komórki na cytometrze przepływowym w celu określenia swoistości i liczby limfocytów T CD8-dodatnich specyficznych dla antygenu, zgodnie ze standardowymi protokołami.

09:45

Wykrywanie zmiany glikoproteiny powierzchniowej wariantu Trypanosoma brucei za pomocą magnetycznego sortowania komórek i cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:55

Analiza remodelingu adhezji powierzchni komórek w odpowiedzi na naprężenia mechaniczne za pomocą kulek magnetycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:16

Wytwarzanie anizotropowych polimerowych sztucznych komórek prezentujących antygen do aktywacji limfocytów T CD8 +

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:44

Ekspansja, oczyszczanie i ocena funkcjonalna komórek NK z krwi obwodowej człowieka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:18

Sztuczne komórki prezentujące antygen oparte na HLA-Ig dla efektywnej ekspansji ludzkich CTL ex vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:18

Aktywacja i ekspansja komórek Natural Killer T (NKT) za pośrednictwem sztucznych komórek prezentujących antygen (aAPC)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:58

Wzbogacanie limfocytów T swoistych dla epitopu z wykorzystaniem tetramerów peptyd-MHC

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:07

Obrazowanie całych zwierząt i techniki cytometrii przepływowej do analizy odpowiedzi limfocytów T CD8 + specyficznych dla antygenu po szczepieniu nanocząstkami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:01

Zoptymalizowana metoda izolowania i namnażania niezmiennych limfocytów T NK ze śledziony myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:25

Wykrywanie i wzbogacanie rzadkich limfocytów B specyficznych dla antygenu w celu analizy fenotypu i funkcji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026