$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Komórki tuczne - białe krwinki zawierające ziarnistości cytoplazmatyczne wypełnione mediatorami stanu zapalnego - odgrywają główną rolę we wrodzonych i nabytych odpowiedziach immunologicznych.
Aby wyizolować komórki tuczne typu tkanki łącznej z jamy otrzewnej – wypełnionej płynem przestrzeni, w której znajdują się narządy jamy brzusznej – weź uśpioną mysz unieruchomioną w pozycji leżącej. Wykonaj podłużne nacięcie aż do mostka, odsłaniając ścianę brzucha.
Jama otrzewnej znajduje się pod ścianą jamy brzusznej, zawierającą płyn, który zawiera kilka komórek odpornościowych, w tym makrofagi, limfocyty, leukocyty wielojądrzaste i komórki tuczne.
Aby wyizolować komórki przez płukanie otrzewnowe - zasysanie treści dootrzewnowej - wstrzyknij lodowatą pożywkę wzrostową do jamy otrzewnej bez perforacji narządów, unikając wycieku krwi. Zimna pożywka pomaga utrzymać żywotność komórek.
Ostrożnie potrząsaj myszą przez odpowiedni czas, mieszając komórki odpornościowe z pożywką. Włożyć pustą strzykawkę do jamy. Powoli odsysaj pożywkę — odzyskując większość wstrzykniętego płynu w celu uzyskania lepszej wydajności komórkowej.
Przenieść zawiesinę komórek do probówki zbiorczej. Wirować w celu wytrącenia komórek w postaci osadu. Odrzucić supernatant. Zawiesić osad w odpowiednim podłożu.
Płytkie komórki i inkubować je w warunkach fizjologicznych, pozwalając komórkom przylegać do naczynia hodowlanego. Dodaj specyficzne cytokiny, które wiążą się ze swoimi receptorami na komórkach tucznych, indukując proliferację komórek.
Namnażone komórki są gotowe do dalszych testów.
Aby rozpocząć tę procedurę, spryskaj uśpioną mysz 70% etanolem i przymocuj ją do bloku pianki grzbietem do dołu za pomocą szpilek. Za pomocą nożyczek o krawędziach usuń skórę z brzucha myszy i unikaj uszkodzenia jamy otrzewnej.
Następnie wstrzyknij 7 mililitrów lodowatego podłoża RPMI do jamy otrzewnej, ostrożnie wprowadzając igłę o rozmiarze 27 do otrzewnej. Nie należy perforować żadnych narządów i używać miejsca w okolicy tłuszczu najądrza, aby zmniejszyć ryzyko perforacji narządu.
Po wstrzyknięciu należy potrząsać myszą przez 1 minutę, aby odłączyć komórki otrzewnej od podłoża RPMI. Nie potrząsaj myszą zbyt mocno, aby uniknąć uszkodzenia narządów wewnętrznych i zanieczyszczenia jamy otrzewnej krwią. Następnie należy ponownie użyć strzykawki, wyposażając ją w nową kaniulę o rozmiarze 20.
Przesuń narządy wewnętrzne na jedną stronę, przechylając blok piankowy i delikatnie stukając nim o ławkę, aby ułatwić aspirację podłoża z drugiej strony. Następnie włóż igłę o rozmiarze 20G, skośnie do góry, aby delikatnie i powoli zassać płyn z jamy brzusznej, aby uniknąć zatkania przez narządy wewnętrzne.
Zbierz jak najwięcej płynu. Następnie wyjąć igłę ze strzykawki i przenieść zawiesinę pobranych komórek do probówki zbiorczej na lodzie. Wyrzuć probówkę z próbką, jeśli widoczne jest zanieczyszczenie krwi.
Odwirować probówkę z czystą zawiesiną komórkową o sile 300 x g przez 5 minut. Pod sterylnym kapturem odessać supernatant. Zawiesić osady próbki w zimnym podłożu PMC i przenieść zawiesinę komórek do kolby do hodowli komórek o powierzchni 25 centymetrów kwadratowych.
Następnie dodaj czynniki wzrostu IL3 i SCF do końcowych stężeń odpowiednio 10 nanogramów na mililitr i 30 nanogramów na mililitr. Inkubuj komórki przez około 48 godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aż do następnej procedury.