$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zacznij od dorosłych much Drosophila melanogaster, którym wstrzyknięto E. coli. W pożądanych punktach czasowych po wstrzyknięciu przenieś znieczulone muchy do oddzielnych probówek mikrowirówek na lodzie, zmniejszając ich aktywność metaboliczną.
Dodaj bufor i homogenizuj muchy, rozkładając tkankę, uwalniając E. coli i endogenną mikrobiotę jelitową.
Przenieść każdy homogenat muchowy zawierający E. coli do wielodołkowych dołków płytkowych. Napełnij pozostałe studzienki buforem. Przeprowadzić seryjne rozcieńczanie homogenatu zawierającego E. coli.
Rozcieńczoną zawiesinę homogenatu z każdej studzienki wraz z dyskretnymi plamkami należy umieścić na płytce z agarem odżywczym, zaczynając od najniższego rozcieńczenia. Pozwól, aby plamy wchłonęły się w agar. Inkubuj płytkę przez noc, aby umożliwić namnażanie się E. coli, tworząc widoczne kolonie. Czas inkubacji ma kluczowe znaczenie dla zapobiegania tworzeniu się endogennych kolonii mikrobioty jelitowej muchy.
Policzyć kolonie E. coli dla każdej muchy z rozcieńczeń z policzalnymi, nienakładającymi się koloniami. Obliczyć jednostkę tworzącą kolonię - żywotne obciążenie bakteryjne - w początkowym homogenacie w różnych punktach czasowych po wstrzyknięciu.
Zmniejszone obciążenie E. coli w czasie sugeruje usuwanie bakterii przez układ odpornościowy muchy.
Umieść podgrupę zakażonych much w oddzielnych probówkach do mikrowirówek na lodzie. Dodaj 250 mikrolitrów PBS do każdej probówki i użyj tłuczka do homogenizacji much. Następnie umieść homogenat na płytce agarowej LB za pomocą spiralnej płytki.
Alternatywnie, w celu podzielenia homogenatu na płytki przez seryjne rozcieńczanie, przenieść każdy homogenat muchowy do pierwszego rzędu płytki 96-dołkowej i wypełnić każdą studzienkę z pozostałych rzędów 90 mikrolitrami PBS. Za pomocą pipety wielokanałowej pobrać 10 mikrolitrów z pierwszego rzędu zawierającego homogenat muchowy i dozować homogenat do drugiego rzędu.
Pipetować w górę i w dół co najmniej 10 razy, aby dokładnie wymieszać homogenat, a następnie pobrać 10 mikrolitrów homogenatu i przenieść go do następnego rzędu. Powtórz tę procedurę, używając pozostałych wierszy. Zaczynając od dolnego rzędu, za pomocą pipety wielokanałowej pobierz 10 mikrolitrów z każdej studzienki i umieść je na płytce LB.
Upewnij się, że próbki są dozowane jako dyskretne miejsca, które nie stykają się ze sobą. Powtarzać ten krok, aż zostaną pobrane próbki ze wszystkich studzienek z każdego rzędu, dozując je w malejącej kolejności rozcieńczenia na płytce LB. Niezależnie od zastosowanej metody powlekania, należy uważać, aby nie zarosnąć płytek, aby kolonie pozostały małe i dyskretne.
Wyjąć płytkę z inkubatora, gdy eksperymentalne bakterie wyhodują widoczne kolonie, ale zanim kolonie mikrobioty jelitowej Drosophila staną się widoczne około 24 godziny później.
W przypadku płytek spiralnych należy policzyć kolonie, które rosną za pomocą automatycznego licznika kolonii, który może oszacować obciążenie bakteryjne na mililitr homogenatu na podstawie liczby i położenia kolonii na płytce.
W przypadku płytek punktowych należy ręcznie policzyć kolonie dla każdej muchy z dowolnego rozcieńczenia zawierającego od 30 do 300 kolonii i obliczyć liczbę bakterii na mililitr oryginalnego homogenatu.