Wykrywanie przylegania bakterii do komórek gospodarza za pomocą obrazowania fluorescencyjnego

0 wyświetleń3:05 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pobrać płytkę wielodołkową zawierającą przylegającą monowarstwę komórek nabłonka podatną na przyleganie bakterii.

Dodaj różną liczbę znakowanych białkiem fluorescencyjnym Pseudomonas aeruginosa, bakterii chorobotwórczej, aby uzyskać pożądany stosunek bakterii do komórek nabłonka.

Wirówka, aby zbliżyć bakterie do komórek nabłonka, ułatwiając interakcje.

Pilusy typu IV, włókna białkowe bakterii, odgrywają kluczową rolę, wiążąc się ze specyficznymi glikolipidami na komórkach nabłonka, pośrednicząc w przyleganiu bakterii do komórek gospodarza.

Po inkubacji przemyć buforem w celu usunięcia nieprzylegających bakterii. Napraw komórki, aby zachować strukturę komórki.

Dodaj DAPI, barwnik fluorescencyjny, który silnie wiąże się z regionami DNA bogatymi w A-T, barwiąc jądro. Przykryj komórki buforem, aby zapobiec wysuszeniu komórek.

Uzyskaj obrazy bakterii znakowanych GFP przyczepionych do komórek nabłonka z jądrem barwionym DAPI. Wylicz przylegające bakterie na pojedynczej komórce nabłonka.

Zwiększona liczba bakterii przylegających na komórkę gospodarza w sposób zależny od dawki umożliwia ilościowe określenie interakcji gospodarz-patogen.

W celu przeprowadzenia testu przylegania bakterii należy trzykrotnie przemyć wcześniej wyhodowane monowarstwy komórek A549, dodając 100 mikrolitrów ciepłego PBS do każdej studzienki i delikatnie pipetować w górę iw dół. Następnie odrzuć PBS. Alternatywnie, po dodaniu PBS, odczekaj dziesięć sekund, a następnie usuń PBS za pomocą próżni.

Aby określić kinetykę asocjacji bakteryjnej, należy nałożyć na komórki 100 mikrolitrów pożądanych stężeń zawiesiny bakteryjnej o różnej wielokrotności infekcji. Zakręć bakterie i inkubuj zainfekowane komórki A549 w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla przez dodatkową godzinę. Usuń niezwiązane bakterie, przemywając monowarstwy pięciokrotnie ciepłym PBS, jak pokazano.

Następnie utrwal komórki, dodając 100 mikrolitrów 4% formaldehydu do wszystkich dołków 96-dołkowej płytki na lodzie. Po 15 minutach przemyć płytkę trzykrotnie PBS w celu usunięcia roztworu utrwalającego, barwiąc jądra 50 nanogramami na mililitr barwnika DAPI przez 10 minut w temperaturze pokojowej.

Po umyciu komórek PBS przykryj zainfekowane komórki A549 100 mikrolitrami PBS, aby uniknąć wysuszenia, a następnie przechowuj płytkę w temperaturze 4 stopni Celsjusza do dwóch dni w ciemności lub przystąp do obrazowania.

15:29

Testy mikroskopowe do wysokoprzepustowych badań przesiewowych czynników gospodarza zaangażowanych w zakażenie komórek hela Brucellą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:22

Szybki test zjadliwości bakterii oparty na obrazie przy użyciu ameby

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:23

Wizualizacja oporności bakterii za pomocą fluorescencyjnych sond antybiotykowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:57

In Vitro Analiza Adhezji Bakteryjnej do Komórek Nabłonkowych Ssaków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:57

Barwienie komórek bakteryjnych i przygotowanie do badań immunologicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:34

Test adherencji opsonowej do oceny opsonizacji bakterii otoczkowanych przez przeciwciała antykapsułkowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:23

Metody mikroskopii fluorescencyjnej do określania żywotności bakterii w połączeniu z komórkami ssaków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:22

Materiały biomimetyczne do charakteryzowania interakcji bakteria-gospodarz

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:16

Porphyromonas gingivalis jako organizm modelowy do oceny interakcji bakterii beztlenowych z komórkami gospodarza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:07

Przyleganie bakterii do powierzchni roślin mierzone w laboratorium

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026