$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź probówki do cytometrii przepływowej zawierające niezaładowane komórki Rajiego i enterotoksynę B Staphylococcus aureus lub komórki Raji obciążone SEB.
Te załadowane SEB komórki Raji działają jako zastępcze komórki B prezentujące antygen zawierający superantygen SEB skompleksowany z cząsteczkami MHC klasy II.
Inkubować z pan-leukocytami.
Receptory limfocytów T, TCR na limfocytach T wiążą się z SEB na komórkach Raji, które wraz z sygnałami kostymulującymi tworzą stabilne połączenie komórka-komórka, synapsę immunologiczną, co prowadzi do aktywacji limfocytów T.
To uruchamia wewnątrzkomórkowe szlaki sygnałowe, powodując przegrupowanie cytoszkieletu aktyny, z grupowaniem cząsteczek sygnałowych i receptorów powierzchniowych w synapsie.
Po inkubacji napraw komórki, aby zachować ich struktury komórkowe. Przepuszczalność komórek w celu uzyskania dostępu do celów wewnątrzkomórkowych.
Dodaj znakowane fluoroforem przeciwciała anty-CD3, falloidynę i DAPI, które wiążą się z CD3 odpowiednio w kompleksie TCR, filamentach aktynowych i DNA.
Za pomocą obrazowego cytometru przepływowego wizualizuj sygnały fluorescencyjne z CD3 i aktyny, aby określić ich wzbogacenie w synapsie w obecności SEB.
Zacznij od zmieszania jednego mililitra świeżo pobranej ludzkiej krwi obwodowej z 30 mililitrami buforu do lizy ACK w 50-mililitrowej stożkowej probówce. Po ośmiu minutach w temperaturze pokojowej napełnij probówkę PBS w celu odwirowania i ponownie zawieś osad w dwóch mililitrach pożywki hodowlanej na 60-minutową inkubację w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Pod koniec inkubacji dodać 5 x 105 Staphylococcus aureus enterotoksyny B lub SEB załadowane lub rozładowane komórki Raji w 500 mikrolitrach pożywki hodowlanej do pojedynczych probówek FACS, a następnie 650 mikrolitrów panleukocytów. Odwiruj kokultury i ponownie zawieś granulki w 150 mikrolitrach świeżej pożywki hodowlanej na 45-minutową inkubację w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Następnie delikatnie wiruj komórki przez 10 sekund przy 100 obr./min, dodając 1,5 mililitra 1,5% paraformaldehydu. Po 10 minutach w temperaturze pokojowej przerwij utrwalanie jednym mililitrem PBS uzupełnionym 1% BSA i zbierz komórki przez odwirowanie. Ponownie zawiesić granulki w 100 mikrolitrach PBS plus BSA i 0,1% saponiny i dodać próbki komórek do dwóch pojedynczych dołków 96-dołkowej płytki dolnej w kształcie litery U.
Po 15 minutach w temperaturze pokojowej odwirować płytkę i ponownie zawiesić granulki w 50 mikrolitrach PBS plus BSA i saponiny, zawierających przeciwciała lub związki sprzężone z fluoroforem na 30-minutową inkubację w ciemności w temperaturze pokojowej. Pod koniec inkubacji umyj komórki trzykrotnie w 150 mikrolitrach PBS plus BSA i saponiny, a następnie ponownie zawieś granulki w 60 mikrolitrach PBS.
Aby zobrazować komórki za pomocą cytometrii przepływowej, otwórz oprogramowanie analityczne, sprawdź poziom cieczy i kliknij przycisk Start Up w menu urządzenia. Następnie kliknij przycisk Załaduj i po wyświetleniu monitu załaduj próbki do portu.
Na karcie Oświetlenie zmień moc lasera wzbudzenia na odpowiednie długości nanometrów. Następnie dostosuj bramki dla kanałów 4 i 11 oraz dostosuj obszar dla kanału 1.
Aby ocenić regulacje bramkowania i mocy lasera, przełącz menu View na odpowiednią bramkę i dostosuj bramki i moce lasera, aż komórki i pary komórek będą widoczne. Następnie na karcie File Acquisition (Pobieranie plików) zdefiniuj nazwę próbki i liczbę obrazów do pobrania, a także odpowiednią bramkę do barwienia CD3, a następnie kliknij przycisk Acquire, aby rozpocząć akwizycję.