$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź płytkę wielodołkową zawierającą przylegające monowarstwy komórek nabłonka. Zastąp pożywkę pożywką niezawierającą surowicy, zapobiegając interferencji białek surowicy. Po inkubacji usuń pożywkę. Umyj komórki buforem. Dodać schłodzone podłoże bez surowicy zawierające witronektynę. Inkubować w niższych temperaturach.
N-końcowa domena RGD witronektyny wiąże się z receptorami integryny na powierzchni komórki nabłonka. Niższe temperatury hamują internalizację komórkową kompleksu witronektyna-integryna.
Po wysyceniu receptora integryny usuń pożywkę. Przemyć buforem w celu usunięcia nadmiaru witronektyny, który może wpływać na bakteryjne wiązanie integryny zależnej od witronektyny.
Dodać zawiesinę Haemophilus influenzae typu f lub Hif, bakterii Gram-ujemnych. Inkubować.
Białko H na powierzchni Hif wiąże się z C-końcem witronektyny, ułatwiając przyleganie Hif do komórki nabłonka i późniejszą internalizację.
Usuń nośnik i umyj buforem, aby usunąć niezwiązany Hif. Użyj enzymu odłączającego komórki, aby zebrać komórki. Dodaj pożywkę zawierającą surowicę, aby zatrzymać reakcję enzymatyczną. Przenieść zawiesinę komórek do szklanej rurki zawierającej szklane kulki. Wir do lizy komórek, uwalniając zinternalizowane i przyczepione do powierzchni bakterie.
Rozcieńczyć lizat pożywką bez surowicy i nasionami na czekoladowej płycie agarowej. Wysiaduj dla Hif, aby utworzyć kolonie. Policz kolonie.
Większa liczba kolonii wskazuje na zwiększoną adhezję Hif do komórek nabłonka w obecności witronektyny.
Hodowla komórek nabłonkowych A549 zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Po jednym płukaniu i trypsynizacji komórek w temperaturze 37 stopni Celsjusza, rozcieńczyć zawiesinę komórek do 5000 komórek na mililitr za pomocą kompletnej pożywki zawierającej 5 mikrogramów na mililitr gentamycyny.
Przed infekcją bakteryjną zastąp pożywkę w studzienkach pożywką F12 i inkubuj przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Umyj monowarstwę komórek trzykrotnie 1 mililitrem PBS w temperaturze pokojowej. Następnie umieść płytkę na lodzie i dodaj 200 mikrolitrów wstępnie schłodzonej pożywki F12, zawierającej 10 mikrogramów na mililitr witronektyny.
Po inkubacji płytki w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 1 godzinę, odrzucić roztwór przez pipetowanie i dwukrotnie przemyć warstwę komórkową 1 mililitrem PBS w temperaturze pokojowej. Dodaj 100 mikrolitrów świeżo wyhodowanego Hif typu dzikiego w pożywce F12 do każdej studzienki. Inkubuj płytkę przez 2 godziny w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnie odessać pożywkę pipetą i trzykrotnie przemyć komórki nabłonkowe A549 PBS w ilości 50 mikrolitrów roztworu do odrywania komórek, a następnie przeprowadzić 5-minutową inkubację w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Następnie dodaj 50 mikrolitrów kompletnej pożywki F12 na studzienkę, aby zatrzymać reakcję enzymatyczną. Przenieś komórki nabłonka z każdej studzienki do 6-mililitrowej szklanej rurki zawierającej 4 szklane kulki. Lizuj komórki w temperaturze pokojowej, wirując przez 2 minuty.
Po 100-krotnym rozcieńczeniu lizatu komórkowego rozcieńczyć 10 mikrolitrów rozcieńczonej próbki na czekoladowej płytce agarowej. Policz kolonie po całonocnej inkubacji w temperaturze 37 stopni Celsjusza.