Przygotowanie i oznaczanie ilościowe inokulum Mycobacterium bovis BCG lux do zakażenia

0 wyświetleń4:06 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od rozmrożonej kultury Mycobacterium bovis BCG lux, genetycznie zmodyfikowanego bioluminescencyjnego szczepu atenuowanego Mycobacterium bovis wykazującego ekspresję enzymu reporterowej lucyferazy.

Zaszczepić zawiesinę w kolbie hodowlanej zawierającej pożywkę wzrostową uzupełnioną higromycyną z antybiotykiem. Inkubować. BCG lux jest nosicielem genu oporności na higromycynę, co ułatwia jego przetrwanie i wzrost.

Po inkubacji przygotować odpowiednie rozcieńczenia kultur za pomocą buforu w probówkach z luminometrem. Przenieść do luminometru, obciążonego długołańcuchowym roztworem substratu aldehydu alifatycznego. Podczas biegu aldehyd jest wstrzykiwany do zawiesiny prątków, która dostaje się do komórek.

Lucyferazy bakteryjne katalizują utlenianie endogennego zredukowanego mononukleotydu flawinowego i aldehydu, powodując emisję światła niebiesko-zielonego. Zmierzona intensywność bioluminescencji wskazuje na aktywność metaboliczną luksów BCG i koreluje z miarą żywotnych bakterii lub jednostek tworzących kolonie, CFU.

Następnie odwiruj pozostałą kulturę prątków. Zawiesić osad prątków w buforze zawierającym niejonowy środek powierzchniowo czynny, aby zapobiec zbrylaniu się prątków.

Korzystając z pomiarów bioluminescencji, rozcieńczyć zawiesinę, aby uzyskać pożądaną gęstość komórek. Przygotować seryjne rozcieńczenia prątków i umieścić je na płytkach agarowych z dodatkiem higromycyny odżywczej. Inkubuj, pozwalając luksom BCG na tworzenie kolonii.

Obliczyć CFU, aby potwierdzić korelację z intensywnością bioluminescencji. Przygotowany inokulum BCG lux może być wykorzystany do badań nad infekcjami.

Na początek rozmrozić zamrożony 1,2-mililitrowy zapas glicerolu Mycobacterium bovis BCG lux. Szczep szczepionki Montreal przekształcił się w plazmid wahadłowy PSMT-1 przenoszący geny luxAB. W oznakowanej 250-mililitrowej kolbie Erlenmeyera zaszczepij 15 mililitrów bulionu Middlebrook 7H9 rozmrożoną 1,2-mililitrową porcją BCG lux.

Umieścić kolbę w szczelnie zamkniętym pojemniku bezpieczeństwa biologicznego i inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze z wytrząsarką orbitalną z prędkością 220 obr./min przez 72 godziny. Po inkubacji przygotować od jednego do 10 rozcieńczeń kultury w roztworze soli fizjologicznej buforowanym fosforanami w probówkach z luminometrem. Wiruj i załaduj rurki luminometru do luminometru.

Załaduj substrat 1% aldehydu n-decylowego w absolutnym etanolu do platformy wtryskiwacza i zmierz bioluminescencję. Przekształć bioluminescencję w jednostki tworzące kolonie, aby sprawdzić wzrost kultury luksów BCG.

Przenieść kulturę do probówki wirówkowej i wirować z prędkością 2,175 razy g przez 10 minut w temperaturze pokojowej w celu osadzenia komórek. Wyrzucić supernatant do odpowiedniego środka dezynfekującego o znanym działaniu prątkobójczym. Przemyj osad komórkowy dwukrotnie w 50 mililitrach PBS-T, wirując 2,175 razy g przez 10 minut, aby zapobiec zbrylaniu się bakterii.

Po ostatnim przemyciu zdekantować supernatant odpadowy i ponownie zawiesić osad komórek prątków w wymaganej objętości PBS-T w celu rozcieńczenia zawiesiny prątków do pożądanej gęstości komórek. Następnie należy przygotować 10-krotne seryjne rozcieńczenia inokulum na płytkach 24-dołkowych przy użyciu PBS-T.

Umieścić 10 mikrolitrów każdego rozcieńczenia na płytkach agarowych Middlebrook 7H11 w dwóch egzemplarzach, aby wyliczyć liczbę CFU inokulum.

10:29

Wysokoprzepustowy, kompatybilny test do oceny skuteczności leku przeciwko prątkom gruźlicy pasażowanym przez makrofagi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:06

Obrazowanie Mycobacterium tuberculosis u myszy z fluorescencją enzymu reporterowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:34

Identyfikacja markerów wirulencji Mycobacterium abscessus do replikacji wewnątrzkomórkowej w fagocytach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:10

Funkcjonalny test z wykorzystaniem krwi pełnej do pomiaru żywotności prątków, z użyciem BCG lub M.Tb znakowanych genem reporterowym (BCG lux/M.Tb lux)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:45

Modelowanie infekcji u noworodkowych myszy z użyciem kapsulowanych bioluminescencyjnych bakterii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:54

Technika tworzenia modelu infekcji bakteryjnej u larw owadów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:23

Pomiar obciążenia in vivo bakteriami eksprymującymi lucyferazy w larwie owada

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:16

Immunizacja donosowa BCG w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:39

Pomiary pojedynczych komórek pęknięcia wakuolarnego spowodowanego przez patogeny wewnątrzkomórkowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:32

Skuteczność ochronna i odpowiedź immunologiczna płuc po podaniu podskórnym i donosowym BCG myszom

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026