$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zacznij od znieczulonej myszy biorcy, która została uprzednio napromieniowana w celu stłumienia układu odpornościowego gospodarza.
Pozyskanie hematopoetycznych komórek macierzystych od genetycznie innej myszy dawcy w celu naśladowania allogenicznego przeszczepu komórek macierzystych.
Usuń limfocyty T dawcy za pomocą kulek magnetycznych.
Wstrzyknąć tę zawiesinę zubożoną w limfocyty T do przestrzeni zagałkowej myszy biorcy.
Przeszczepione komórki dostają się do krwiobiegu, migrują do naczyń szpiku kostnego i wykorzystują cząsteczki adhezyjne, aby dostać się do niszy, inicjując hematopoezę.
Wstrzyknąć limfocyty T śledziony od allogenicznej myszy dawcy do przestrzeni zagałkowej biorcy, aby wywołać immunologiczną reaktywność krzyżową.
Te alloreaktywne limfocyty T migrują do różnych tkanek.
Receptory powierzchniowe limfocytów T wiążą się z antygenami komórek biorcy, rozpoznając je jako obce.
Powoduje to kaskadę zdarzeń sygnalizacyjnych w obrębie limfocytów T, prowadząc do ich aktywacji.
Aktywowane limfocyty T wywołują kaskadę zapalną charakteryzującą się rekrutacją dodatkowych komórek odpornościowych, które wspólnie uszkadzają tkanki gospodarza, prowadząc do rozwoju choroby przeszczep przeciwko gospodarzowi.
Jednego dnia po napromieniowaniu całego ciała myszy biorcy BALB/c należy umieścić CD45.1/Ly5.1 B6. Mysz dawcy SJL w pozycji leżącej na czystej pochwie roboczej i użyj jednej 13-centymetrowej zakrzywionej i ząbkowanej końcówki kleszczy Semken, aby podnieść futro na jednej pięcie achillesowej.
Za pomocą utwardzonych cienkich 8,5-centymetrowych nożyczek z prostymi końcówkami naciąć skórę między kleszczami a jedną piętą, wydłużając nacięcie czaszki, aby ułatwić usunięcie skóry i sierści z kończyn tylnych. Po usunięciu skóry z kończyn tylnych przeciąć każdy staw biodrowy, skokowy i kolanowy.
Przechowuj udo i trzon każdej tylnej kończyny na jednej 92-milimetrowej szalce Petriego wypełnionej PBS na lodzie i ostrożnie usuń jak najwięcej mięśni z każdej kości, przenosząc każdą oczyszczoną kość udową i piszczelową do 50-mililitrowej probówki sterylnego podłoża RPMI 1640 na mokrym lodzie.
Aby wyizolować szpik kostny, przenieś jedną kość na raz do nowej 92-milimetrowej szalki Petriego wypełnionej świeżą pożywką RPMI 1640 i użyj skalpela, aby odciąć końce każdej kości. Następnie użyj 1-mililitrowej strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 26, aby przepłukać kości jednym mililitrem świeżej pożywki na raz do 50-mililitrowej probówki zbiorczej zawierającej pięć mililitrów pożywki.
Po wypłukaniu wszystkich kości delikatnie odpipetuj kruche kawałki szpiku kostnego w górę i w dół kilka razy, aby wytworzyć zawiesinę jednokomórkową. Przed przefiltrowaniem komórek przez sitko o siatce 40 mikrometrów do nowej 50-mililitrowej probówki zbiorczej, należy osadzać komórki przez odwirowanie i ponownie zawiesić komórki w pięciu mililitrach buforu do lizy potasu chlorku amonu na trzyminutową inkubację w temperaturze pokojowej. Pod koniec inkubacji przerwij reakcję za pomocą 10 mililitrów PBS i ponownie odwiruj komórki.
Zawiesić osad w dwóch mililitrach świeżego PBS w celu policzenia i odłożyć na bok podwielokrotność 6 x 106 komórek do analizy cytometrycznej przepływu. Następnie użyj dostępnego w handlu zestawu do oczyszczania komórek, aby magnetycznie zubożyć limfocyty T CD90.2-dodatnie z zawiesiny jednokomórkowej szpiku kostnego zgodnie z instrukcjami producenta i odłóż na bok 1 x 106-komórkową podwielokrotność eluatu zubożonego w limfocyty T do dalszej analizy cytometrycznej czystości i składu komórek przed i po separacji.
Następnie użyj jednomililitrowej strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 30, aby wstrzyknąć 5 x 10 komórek szpiku kostnego zubożonych w limfocyty T i 100 mikrolitrów PBS dożylnie do przestrzeni zagałkowej zatoki żylnej każdego napromieniowanego biorcy.
Następnego dnia umieść śledzionę pobraną od zwierzęcia dawcy na sitku o siatku o rozmiarze 40 mikrometrów w 50-mililitrowej probówce i za pomocą tłoka strzykawki przeciśnij tkankę śledziony przez sitko do probówki. Przemyć sitko i tłok PBS w celu zebrania wszystkich splenocytów i osadzać komórki przez odwirowanie, po lizie czerwonych krwinek, jak pokazano. Zawiesić białe krwinki do zliczenia i odłożyć na bok podwielokrotność6 x 10 6 komórek do dalszej analizy cytometrycznej przepływu.
W celu całkowitej izolacji limfocytów T CD3-dodatnich z całkowitej liczby splenocytów należy użyć dostępnego w handlu zestawu do oczyszczania komórek zgodnie z instrukcjami producenta i odłożyć podwielokrotność limfocytów T 1 x 106 CD3-dodatnich z dodatniej frakcji komórek do dalszej analizy cytometrycznej czystości i składu komórek, przed i po separacji. Następnie wstrzyknij 7 x 105 alloreaktywnych limfocytów T CD3-dodatnich i 100 mikrolitrów PBS dożylnie do przestrzeni pozagałkowej każdej myszy biorcy, aby wywołać GvHD.