Analiza aktywacji bazofili w obecności testowego alergenu za pomocą cytometrii przepływowej

0 wyświetleń5:37 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pobrać probówki cytometryczne zawierające mieszaninę barwiącą zawierającą znakowane fluorescencyjnie przeciwciała monoklonalne zawieszone w buforze stymulacyjnym

.

Dodać zmniejszające się stężenia testowanego alergenu do kilku probówek. Dodaj przeciwciała anty-IgE do jednej probówki, aby służyły jako kontrola pozytywna za pośrednictwem IgE, i dodaj bufor do innej probówki w celu kontroli ujemnej.

Pobrać pipetą ludzką krew obwodową do probówek. Inkubować.

Jeśli dana osoba jest uczulona na badany alergen, ta ekspozycja powoduje, że alergen wiąże się z przeciwciałami IgE specyficznymi dla alergenu związanymi z receptorami Fc na powierzchni bazofilów.

Alergeny sieciują receptory Fc związane z IgE, powodując aktywację bazofili.

Bazofile ulegają degranulacji, uwalniając wewnątrzkomórkowe ziarnistości zawierające mediatory stanu zapalnego, z regulacją w górę cząsteczek CD63 i CD203c.

Znakowane fluorescencyjnie przeciwciała monoklonalne wiążą się odpowiednio z CD63, CD203c i CCR3 na bazofilach.

Obniż temperaturę, aby zatrzymać degranulację bazofilów.

Dodaj bufor, aby lizować erytrocyty i naprawić komórki.

Za pomocą cytometru przepływowego zidentyfikuj bazofile z populacji limfocytów.

Używając CD63 jako markera aktywacji, analizuj aktywację bazofili przy malejących stężeniach alergenów.

Zacznij od zebrania krwi obwodowej w 9-mililitrowych probówkach z heparyną i umieść próbki w wirniku, aby utrzymać je w temperaturze pokojowej, aż będą wymagane w protokole eksperymentalnym.

Oznacz dwie 5-mililitrowe probówki cytometru każda dla kontroli ujemnej i kontroli pozytywnej. Oznacz również po jednej probówce dla różnych stężeń alergenów lub leków, które są testowane. Następnie umieść rurki w stojaku, aby rurki idealnie pasowały bez poślizgu.

Do pierwszej kontroli pozytywnej należy przygotować 4-mikromolowy roztwór N-formylometylo-leucylo-fenyloalaniny lub fMLP w 0,05% PBST, aby potwierdzić jakość bazofili. Do drugiej kontroli dodatniej należy przygotować roztwór anty-IgE o stężeniu 0,05 miligrama na mililitr przy użyciu PBST. Przygotuj mieszankę barwiącą, dodając po 1 mikrolitrze przeciwciał CCR3-APC, CD203c-PE i CD63-FITC na 20 mikrolitrów buforu stymulacyjnego. Następnie dodaj 23 mikrolitry tej mieszanki barwiącej do każdej probówki.

Dodaj 100 mikrolitrów PBST do probówek kontroli ujemnej, dodaj 100 mikrolitrów fMLP do jednej z dodatnich probówek kontrolnych i dodaj 100 mikrolitrów anty-IgE do drugiej. Do pozostałych probówek dodaj 100 mikrolitrów różnych stężeń alergenu lub leku i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut. Po inkubacji delikatnie dodaj 100 mikrolitrów krwi do każdej probówki, aby uniknąć hemolizy. Następnie delikatnie zawiruj rurki i inkubuj je przez 25 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza w łaźni termostatycznej ze średnim mieszaniem.

Trzymaj probówki w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez co najmniej pięć minut, aby zatrzymać degranulację. Do każdej probówki dodaj 2 mililitry buforu lizującego w celu lizy erytrocytów. Wiruj każdą probówkę, a następnie inkubuj probówki przez 5 minut w temperaturze pokojowej. Odwirować probówki o masie 300 x g w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Następnie przewróć stojak do zlewu, aby zdekantować supernatant, podczas gdy komórki pozostaną na dnie rurek. Dodaj 3 mililitry PBST do każdej probówki, aby umyć komórki i wymieszać probówki. Wykonać drugą rundę wirowania przy użyciu tego samego zestawu parametrów i zdekantować supernatant, przewracając stojak do zlewu. Następnie próbki należy przechowywać w temperaturze 4 stopni Celsjusza, chronić przed światłem do czasu cytometrii przepływowej.

Podłącz cytometr przepływowy do oprogramowania komputerowego i poczekaj, aż cytometr będzie gotowy. Załaduj ustawienia szablonu i instrumentu zgodnie z opisem w rękopisie tekstowym. Rozpocznij proces pobierania próbki.

Aby wybrać aktywowane bazofile, najpierw pobierz limfocyty z wykresu Side Scatter - Forward Scatter. Następnie zdobądź bazofile z populacji limfocytów jako komórki CCR3-dodatnie CD203c-dodatnie i uzyskaj co najmniej 500 bazofili na probówkę. Ustaw próg ujemny CD63 na około 2,5% za pomocą probówek kontroli ujemnej i przeanalizuj próbki.

10:42

Analiza cytometryczna przepływowa alergenu związanego z cząstkami bet v 1 w PM10

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:34

Podejście diagnostyczne z rozdzielczością komponentową w badaniu alergenów pyłków traw u mieszkańców Chin z południa z alergicznym nieżytem nosa i/lub astmą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:10

Zastosowanie technologii mikroprzepływowej Biochip do wykrywania immunoglobuliny E (sIgE) swoistej dla alergenu w surowicy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:22

Test aktywacji bazofili do badania mechanizmów IgE-zależnych w nadwrażliwości na leki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:52

Analiza dojrzewania i migracji komórek dendrytycznych płuc podczas alergicznego zapalenia dróg oddechowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:39

Humanizowany test uwalniania enzymu mediatorowego: immunochemiczna metoda badania potencjału alergicznego antygenu testowego poprzez monitorowanie odpowiedzi degranulacji bazofili in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:03

Identyfikacja i liczenie komórek odpornościowych w płynie płucnym oskrzelowo-pęcherzykowym metodą cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:57

Test cytometrii przepływowej w celu identyfikacji podzbiorów komórek odpornościowych w komórkach jednojądrzastych krwi obwodowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:13

Technika cytometrii przepływowej opartej na obrazie do oceny zmian w funkcji granulocytów in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:44

Identyfikacja i charakterystyka immunogennych gatunków RNA w alergenach HDM, które modulują eozynofilowe zapalenie płuc

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026