$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pobrać probówki cytometryczne zawierające mieszaninę barwiącą zawierającą znakowane fluorescencyjnie przeciwciała monoklonalne zawieszone w buforze stymulacyjnym
.
Dodać zmniejszające się stężenia testowanego alergenu do kilku probówek. Dodaj przeciwciała anty-IgE do jednej probówki, aby służyły jako kontrola pozytywna za pośrednictwem IgE, i dodaj bufor do innej probówki w celu kontroli ujemnej.
Pobrać pipetą ludzką krew obwodową do probówek. Inkubować.
Jeśli dana osoba jest uczulona na badany alergen, ta ekspozycja powoduje, że alergen wiąże się z przeciwciałami IgE specyficznymi dla alergenu związanymi z receptorami Fc na powierzchni bazofilów.
Alergeny sieciują receptory Fc związane z IgE, powodując aktywację bazofili.
Bazofile ulegają degranulacji, uwalniając wewnątrzkomórkowe ziarnistości zawierające mediatory stanu zapalnego, z regulacją w górę cząsteczek CD63 i CD203c.
Znakowane fluorescencyjnie przeciwciała monoklonalne wiążą się odpowiednio z CD63, CD203c i CCR3 na bazofilach.
Obniż temperaturę, aby zatrzymać degranulację bazofilów.
Dodaj bufor, aby lizować erytrocyty i naprawić komórki.
Za pomocą cytometru przepływowego zidentyfikuj bazofile z populacji limfocytów.
Używając CD63 jako markera aktywacji, analizuj aktywację bazofili przy malejących stężeniach alergenów.
Zacznij od zebrania krwi obwodowej w 9-mililitrowych probówkach z heparyną i umieść próbki w wirniku, aby utrzymać je w temperaturze pokojowej, aż będą wymagane w protokole eksperymentalnym.
Oznacz dwie 5-mililitrowe probówki cytometru każda dla kontroli ujemnej i kontroli pozytywnej. Oznacz również po jednej probówce dla różnych stężeń alergenów lub leków, które są testowane. Następnie umieść rurki w stojaku, aby rurki idealnie pasowały bez poślizgu.
Do pierwszej kontroli pozytywnej należy przygotować 4-mikromolowy roztwór N-formylometylo-leucylo-fenyloalaniny lub fMLP w 0,05% PBST, aby potwierdzić jakość bazofili. Do drugiej kontroli dodatniej należy przygotować roztwór anty-IgE o stężeniu 0,05 miligrama na mililitr przy użyciu PBST. Przygotuj mieszankę barwiącą, dodając po 1 mikrolitrze przeciwciał CCR3-APC, CD203c-PE i CD63-FITC na 20 mikrolitrów buforu stymulacyjnego. Następnie dodaj 23 mikrolitry tej mieszanki barwiącej do każdej probówki.
Dodaj 100 mikrolitrów PBST do probówek kontroli ujemnej, dodaj 100 mikrolitrów fMLP do jednej z dodatnich probówek kontrolnych i dodaj 100 mikrolitrów anty-IgE do drugiej. Do pozostałych probówek dodaj 100 mikrolitrów różnych stężeń alergenu lub leku i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut. Po inkubacji delikatnie dodaj 100 mikrolitrów krwi do każdej probówki, aby uniknąć hemolizy. Następnie delikatnie zawiruj rurki i inkubuj je przez 25 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza w łaźni termostatycznej ze średnim mieszaniem.
Trzymaj probówki w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez co najmniej pięć minut, aby zatrzymać degranulację. Do każdej probówki dodaj 2 mililitry buforu lizującego w celu lizy erytrocytów. Wiruj każdą probówkę, a następnie inkubuj probówki przez 5 minut w temperaturze pokojowej. Odwirować probówki o masie 300 x g w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Następnie przewróć stojak do zlewu, aby zdekantować supernatant, podczas gdy komórki pozostaną na dnie rurek. Dodaj 3 mililitry PBST do każdej probówki, aby umyć komórki i wymieszać probówki. Wykonać drugą rundę wirowania przy użyciu tego samego zestawu parametrów i zdekantować supernatant, przewracając stojak do zlewu. Następnie próbki należy przechowywać w temperaturze 4 stopni Celsjusza, chronić przed światłem do czasu cytometrii przepływowej.
Podłącz cytometr przepływowy do oprogramowania komputerowego i poczekaj, aż cytometr będzie gotowy. Załaduj ustawienia szablonu i instrumentu zgodnie z opisem w rękopisie tekstowym. Rozpocznij proces pobierania próbki.
Aby wybrać aktywowane bazofile, najpierw pobierz limfocyty z wykresu Side Scatter - Forward Scatter. Następnie zdobądź bazofile z populacji limfocytów jako komórki CCR3-dodatnie CD203c-dodatnie i uzyskaj co najmniej 500 bazofili na probówkę. Ustaw próg ujemny CD63 na około 2,5% za pomocą probówek kontroli ujemnej i przeanalizuj próbki.