Test oparty na kulkach multipleksowych do analizy cytokin w próbkach ludzkich łez

0 wyświetleń4:46 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dodaj próbki ludzkich łez i koktajl przeciwciał i kulek do umytej płytki testowej.

Przeciwciała są związane z oznaczonymi kolorami kulkami magnetycznymi, nasączonymi różnymi proporcjami fluoroforów odpowiadających odrębnym sygnaturyom spektralnym, ułatwiając wykrywanie wielu cytokin.

Cytokiny łzowe wiążą się z odpowiadającymi im przeciwciałami wychwytującymi związanymi z kulkami.

Za pomocą magnetycznej podkładki płytkowej osadź kompleksy przeciwciało-kulki. Za pomocą buforu usuń niezwiązane biomolekuły.

Dodaj biotynylowane przeciwciała wykrywające, które przyłączają się do związanych cytokin.

Pipeta koniugat streptawidyny-fikoerytryny, który wiąże się z biotynylowanymi przeciwciałami.

Za pomocą podkładki do płytek usuń niezwiązaną zawartość studzienki. Ponownie zawiesić kompleksy związane z cytokinami w płynie osłonkowym.

Podczas analizy próbki układ fluidyczny transportuje kompleksy kulek do zespołu optycznego.

Pierwszy laser aktywuje wewnętrzne barwniki perełkowe, a uzyskany w ten sposób sygnał identyfikuje określone cytokiny.

Drugi laser aktywuje cząsteczkę reporterową związaną z kompleksem kulkowym, którego intensywność sygnału reprezentuje stężenie cytokin, umożliwiając jednoczesną kwantyfikację wielu cytokin.

Aby przeprowadzić test multipleksowy na bazie kulek, doprowadź wszystkie odczynniki do temperatury pokojowej i wiruj je przez pięć do 10 sekund. Jeśli eluowane próbki łez były przechowywane w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza przed badaniem, rozmrozić zamrożone ekstrakty ze łez na lodzie i odwirować próbki w temperaturze 1000 razy g przez pięć minut. Przygotuj arkusz testowy w konfiguracji pionowej do pracy z ludzkimi wzorcami cytokin QC-1, QC-2 i próbkami.

Dodaj 200 mikrolitrów 1x buforu do płukania do każdego dołka płytki i uszczelnij ją uszczelniaczem do płytek. Następnie inkubować płytkę na wytrząsarce w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Następnie zdekantuj 1x bufor do mycia, odwracając płytkę, i kilkakrotnie postukaj nim o chłonne ręczniki, aby usunąć resztki buforu do płukania ze studzienek.

Następnie dodaj 25 mikrolitrów każdego działającego wzorca ludzkiej cytokiny QC-1, QC-2 i ślepą próbę z samym buforem testowym i próbkami do odpowiednich studzienek. Dodaj 25 mikrolitrów buforu testowego do każdej studzienki. Następnie do studzienek dodaj 25 mikrolitrów 1x roztworu koktajlu z kulkami przeciwciał.

Ponieważ roztwór kulki przeciwciała jest wrażliwy na światło, uszczelnij płytkę i przykryj ją folią aluminiową i pokrywą płytki, aby chronić ją przed światłem podczas testu. Inkubować płytkę w temperaturze czterech stopni Celsjusza na wytrząsarce przez noc. Następnego dnia umieść płytkę na stojaku na talerze automatycznej magnetycznej myjki do płyt i pozostaw ją na minutę, aby osadzać koraliki magnetyczne na dnie studzienki.

Odessać zawartość studzienki i dodać 200 mikrolitrów buforu do płukania na studzienkę za pomocą automatycznej magnetycznej myjki do płyt. Pozostaw talerz na minutę, a następnie odessaj zawartość studzienki jak poprzednio i powtórz mycie jeszcze raz. Dodaj 25 mikrolitrów roztworu przeciwciał detekcyjnych do każdej studzienki. Uszczelnij płytkę, przykryj ją folią aluminiową i pokrywą płytki i inkubuj w temperaturze pokojowej na wytrząsarce przez 60 minut. Następnie dodaj 25 mikrolitrów roztworu streptawidyny-fikoerytryny do każdej studzienki, a po uszczelnieniu i przykryciu płytki inkubować w temperaturze pokojowej na wytrząsarce przez 30 minut.

Po inkubacji umieścić płytkę na magnetycznej podkładce do płytek i pozostawić ją na jedną minutę. Następnie odessać zawartość studzienki i dodać 200 mikrolitrów buforu do płukania na studzienkę. Pozostaw na minutę, a następnie odessaj zawartość studzienki przed ponownym powtórzeniem prania. Dodaj 150 mikrolitrów płynu osłonkowego do każdej studzienki. Następnie umieść płytkę na wytrząsarce na pięć minut w temperaturze pokojowej, aby ponownie zawiesić kulki przeciwciał przed przystąpieniem do odczytu płytki i analizy stężeń cytokin.

11:00

Multipleksowe profilowanie cytokin stymulowanych splenocytów myszy przy użyciu cytometrycznej platformy testów immunologicznych opartych na kulkach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:29

Wpływ preparatów sztucznych łez na aktywność metaboliczną ludzkich komórek nabłonka rogówki po ekspozycji na wysuszenie

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:08

Szybki, multipleksowy test neutralizacji IgG i IgM SARS-CoV-2 z podwójnym reporterem dla multipleksowanego systemu analizy przepływu opartego na kulkach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:29

Dokładny i prosty pomiar cytokiny prozapalnej IL-1β za pomocą testu stymulacji krwi pełnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:45

Multianalitowy test immunobealikowy: Technika testu immunologicznego oparta na przepływie do jednoczesnego wykrywania wielu podtypów przeciwciał w próbce ludzkiej surowicy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:49

Multipleksowy test immunologiczny oparty na kulkach do ilościowego określania wielu celów cytokin

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:22

Test multipleksowy oparty na kulkach do analizy profili cytokin łzowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:37

Stosowanie odczynników referencyjnych w celu potwierdzenia odporności testów uwalniania cytokin w celu przewidywania bezpieczeństwa przeciwciał monoklonalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:43

Podejście mikroprzepływowe do rozwiązywania jednoczesnego i sekwencyjnego wydzielania cytokin w poszczególnych komórkach wielofunkcyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:04

Optymalizacja zbierania łez u myszy do analizy mRNA i białek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026