JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 3:03 min • July 8th, 2025
Rozpocząć od wielodołkowej płytki zawierającej płyn z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego myszy zawierający populację komórek odpornościowych wybarwioną zielonym fluorescencyjnym barwnikiem żywotności.
Wprowadź przeciwciała Fc, aby zablokować receptory Fc komórek odpornościowych.
Dodaj koktajl różnych przeciwciał znakowanych fluoroforem, skierowanych przeciwko określonym markerom komórkowym. Usunąć niezwiązane przeciwciała i ponownie zawiesić komórki w buforze.
Za pomocą cytometrii przepływowej zidentyfikuj singlety o słabej fluorescencji, wskazujące żywe komórki.
Oświetl komórki na 488 nanometrach, powodując emitację czerwonej fluorescencji korelującej z komórkami wykazującymi ekspresję CD11c.
W populacji o wysokiej zawartości CD11c, przy odpowiednich filtrach długości fali, zidentyfikuj białka markerów komórkowych MHC-II na komórkach dendrytycznych i SiglecF na makrofagach.
W populacji z niskim poziomem CD11c ekspresja CD3 na limfocytach T i CD19 na komórkach B umożliwia ich identyfikację.
Oświetl komórki na 405 nanometrach, emitując niebieską fluorescencję, oznaczającą neutrofile wykazujące ekspresję CD11b.
Oświetlanie komórek o długości 633 nanometrów wzbudza dalekoczerwone fluorofory na eozynofilach eksprymujących Ly-6G.
Korzystając z danych cytometrii przepływowej, wylicz obfitość każdego typu komórek odpornościowych w płynie z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego.
Po trzecim pobraniu płukania oskrzelowo-pęcherzykowego należy odwirować połączony aspirat i przechowywać supernatant w temperaturze ujemnej 80 stopni Celsjusza. Zawiesić osad w 200 mikrolitrach buforu do lizy ACK. Po nie więcej niż dwóch minutach w temperaturze pokojowej rozcieńczyć bufor do lizy jednym mililitrem zimnego PBS i zebrać komórki przez odwirowanie.
Zawiesić osad w odpowiedniej objętości PBS dla liczby próbek do analizy i podzielić komórki na odpowiednią liczbę dołków na płytce 96-dołkowej w celu analizy. Zbierz komórki przez kolejne odwirowanie i ponownie zawieś granulki w 50 mikrolitrach bloku FC w PBS.
Po 10 minutach w temperaturze pokojowej dodaj 50 mikrolitrów odpowiedniego koktajlu przeciwciał do każdej studzienki i inkubuj komórki przez 30 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza, chroniąc przed światłem. Pod koniec inkubacji odwirować płytkę i wyrzucić supernatant, ponownie zawieszając granulki do końcowej objętości 200 mikrolitrów buforu FACS na studzienkę do analizy cytometrii przepływowej.
W niniejszym artykule szczegółowo opisano metodę analizy populacji komórek odpornościowych w płycie z płukania bronchoalveolarnego myszy z wykorzystaniem cytometrii przepływowej. Protokół obejmuje barwienie komórek przeciwciałami fluorescencyjnymi w celu identyfikacji specyficznych markerów komórek odpornościowych.
Profilowanie komórek odpornościowych w płyknie bronchoalveolarnym z wykorzystaniem cytometrii przepływowej umożliwia precyzyjną kwantyfikację nacieków zapalnych, co wspiera walidację celu w modelach chorób układu oddechowego. Podejście to dostarcza ilościowych danych specyficznych dla markerów, co usprawnia ograniczanie ryzyka mechanistycznego poprzez powiązanie fenotypów odpornościowych z procesami patofizjologicznymi. Metoda ta wspiera wczesne decyzje badawcze, dostarczając powtarzalnych, wysokotreściowych danych z profilowania immunologicznego, które są kluczowe dla selekcji projektów w badaniach nad immunologią i stanami zapalnymi.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum od odkrycia do badań przedklinicznych, wspierając profilowanie immunologiczne – od testowania hipotez, poprzez optymalizację wiodących związków, aż po walidację przedkliniczną w modelach stanu zapalnego dróg oddechowych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026