Test in vitro oparty na pulsacyjnych komórkach dendrytycznych opartych na szczepionce w celu indukowania proliferacji limfocytów

0 wyświetleń5:16 min • July 8th, 2025

Rozpocznij od dodania testowanych antygenów szczepionkowych do hodowli komórek dendrytycznych.

Komórka dendrytyczna rozpoznaje antygen, internalizuje go poprzez endocytozę za pośrednictwem receptora, dzieli go na mniejsze peptydy i przenosi powstały kompleks antygen-MHC na powierzchnię komórki w celu prezentacji.

Wspólna hodowla komórek dendrytycznych prezentujących antygen z naiwnymi limfocytami T, aby umożliwić interakcję między receptorem limfocytów T a kompleksem antygen-MHC wraz z ich koreceptorami.

Prowadzi to do tworzenia synaps immunologicznych, aktywujących limfocyty T poprzez sygnalizację wewnątrzkomórkową.

Aktywowane limfocyty T ulegają ekspansji klonalnej, tworząc efektorowe limfocyty T.

Dodaj cząsteczki cytokin interleukiny-2 lub IL-2 do hodowli i inkubuj. Wiązanie IL-2 wyzwala sygnalizację wewnątrzkomórkową, umożliwiając proliferację i przeżycie limfocytów.

Weź niewielką objętość kultury i odwiruj. Odrzucić supernatant. Ponownie zawiesić osad komórkowy z komórkami dendrytycznymi prezentującymi antygen i przenieść go do tej samej studzienki.

Ponowna stymulacja antygenem zwiększa proliferację limfocytów.

Wykonaj dalszą analizę, aby określić ilościowo określone markery związane z proliferacją limfocytów.

Aby wygenerować MoDC impulsowe antygenem, dodaj 1 mikrolitr na mililitr szczepionki przeciwko wirusowi wścieklizny lub zawiesiny RV do 1 mililitra naiwnej kultury MoDC na 24-dołkowej płytce i inkubuj płytkę przez 48 godzin w temperaturze 5% dwutlenku węgla i 37 stopni Celsjusza. Siódmego dnia trzymaj 24-dołkową płytkę zawierającą pulsujące antygenem MoDC na lodzie przez 10 minut, a następnie dodaj 1 mililitr lodowatego PBS na dołek i dokładnie wymieszaj. Przenieś zawieszenie do 15-mililitrowej rurki.

Umyj studzienki 2 mililitrami lodowatego PBS. Zbierz pozostałe komórki w każdej studzience i przenieś umytą zawartość do odpowiednich probówek. Odwirować zawiesinę komórkową o masie 500 g przez 7 minut. Po odrzuceniu supernatantu ponownie zawieś osad komórkowy MoDC z impulsem antygenu w kompletnej pożywce hodowlanej, aby dostosować końcowe stężenie 100 000 komórek na mililitr.

W przypadku kohodowli limfocytów MoDC, wysiewaj studzienki sterylnej 24-dołkowej płytki z 1 mililitrem naiwnej zawiesiny komórek limfocytów i 1 mililitrem zawiesiny MoDC impulsowej antygenem lub niepulsacyjnej antygenem w siódmym dniu impulsu antygenu. Po dwóch dniach inkubacji uzupełnij każdą studzienkę 20 nanogramami na mililitr rekombinowanej interleukiny-2 i kontynuuj inkubację przez kolejne 120 godzin.

W dniu 14 przenieś 1 mililitr kokultury do sterylnej probówki o pojemności 1,5 mililitra i odwiruj probówkę. Następnie ponownie zawieś osad komórkowy za pomocą 1 mililitra impulsów antygenowych lub niepulsacyjnych MoDC. Dobrze wymieszaj i przenieś zawiesiny komórek do odpowiednich dołków.

Po barwieniu powierzchni komórek PBMC oraz nieprawidłowo pobranych limfocytów i monocytów, przenieść 1 mililitr zawiesiny komórkowej do sterylnej probówki o pojemności 1,5 mililitra za pomocą pipety i wirować przez 10 minut przy 500 g. Następnie ponownie zawiesić osad w 1 mililitrze PBS i przenieść go do 15-mililitrowej probówki. Zbierz również pozostałe komórki i odpowiadające im probówki za pomocą 1 mililitra PBS. Następnie dodaj 10 mililitrów PBS do 15-mililitrowej probówki zawierającej komórki i wymieszaj przez pipetowanie.

Po odwirowaniu probówki przez 7 minut przy 850 g, usunąć supernatant i ostrożnie ponownie zawiesić osad komórkowy z pozostałą zawiesiną pozostałą po dekantacji supernatantu. Przenieś zawiesinę komórek na 96-dołkową płytkę z dnem w kształcie litery V i uszczelnij studzienki, aby uniknąć rozlania.

Po zakończeniu barwienia wykonaj analizę cytometrem przepływowym. Z podglądu w czasie rzeczywistym dostosuj próg fluorescencji, w tym napięcie, wzmocnienie i rozmiar komórki, aby ostatecznie narysować bramki wokół żądanej populacji komórek, wykluczając wszelkie zanieczyszczenia komórkowe.

06:09

Wytwarzanie niedojrzałych, dojrzałych i tolerogennych komórek dendrytycznych o różnych fenotypach metabolicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:08

Nowy protokół generowania fizjologicznych immunogennych komórek dendrytycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:02

In vivo (in vivo) Badania przesiewowe immunogenności pęcherzyków zewnątrzkomórkowych pochodzących z guza za pomocą cytometrii przepływowej limfocytów T śledziony

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:39

Wytwarzanie in vitro plazmocytoidalnych komórek dendrytycznych ze wspólnych progenitorów limfoidalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:45

Immunologiczna technika monitorowania wytwarzania cytotoksycznych limfocytów T za pośrednictwem adiuwantów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:40

Przygotowanie dojrzałych komórek dendrytycznych obciążonych antygenem nowotworowym do immunoterapii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:43

Opracowanie nowej szczepionki z komórek dendrytycznych z wykorzystaniem komórek macierzystych czerniaka i raka płaskonabłonkowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:04

Linia komórkowa regulowana tetracykliną wytwarza wektory lentiwirusowe o wysokim mianie, które są specyficznie ukierunkowane na komórki dendrytyczne

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:05

In vivo (in vivo) Test do wykrywania swoistej dla antygenu funkcji cytolitycznej limfocytów T przy użyciu modelu szczepienia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Szybka ocena in vivo zdolności wytwarzania cytotoksycznych limfocytów T adiuwantu w celu opracowania szczepionki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026