Zlokalizowane obrazowanie powierzchniowego rezonansu plazmonowego w celu wykrycia wydzielin białkowych z pojedynczej komórki

0 wyświetleń5:00 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od szklanego chipa czujnika z funkcjonalizowanymi złotymi układami nanostrukturalnymi z samoorganizującą się monowarstwą zawierającą grupy karboksylowe.

Zabezpiecz chip w zespole mikroprzepływowym i wprowadź łącznik, aby aktywować grupy karboksylowe.

Dodaj ligandy peptydowe, sprzężone z aktywowanymi grupami karboksylowymi za pomocą łączników.

Potraktuj buforem dezaktywującym związek, dezaktywując niespecyficzne miejsca wiązania, i przemyj buforem.

Skoncentruj spolaryzowane światło na chipie. Korzystając z systemu obrazowania zlokalizowanego powierzchniowego rezonansu plazmonowego, uzyskaj obraz matryc - wyglądających jako jasne kwadraty na ciemnym tle.

Pod kątem rezonansowym elektrony złota pochłaniają światło. Zmierz natężenie odbitego światła pod odpowiednim kątem, aby wygenerować odpowiedź czujnika.

Wprowadź komórki hybrydoma wydzielające białko, które wiążą się z chipem i myją.

Przyłączone komórki wydzielają białka, które oddziałują z ligandami na pobliskiej macierzy.

Interakcje te zmieniają kąt i intensywność odbitego światła, powodując zmianę odpowiedzi czujnika, potwierdzając aktywność wydzielniczą komórek.

W celu oczyszczenia i regeneracji zlokalizowanego powierzchniowego rezonansu plazmonowego lub chipów LSPR, popiół plazmowy o mocy 40 watów w 300-mililitrowej mieszaninie 5% wodoru i 95% argonu przez 45 sekund. Funkcjonalizować powierzchnię złota i nanostruktury natychmiast po spopielaniu plazmowym, zanurzając chip w dwuskładnikowym etanolowym roztworze tiolu składającym się ze stosunku 3 do 1 SPO i SPC. Po pozostawieniu chipa na noc w roztworze tiolu w celu utworzenia samoorganizującej się monowarstwy, należy go przepłukać etanolem i wysuszyć gazowym azotem.

Załaduj chip LSPR do specjalnie wykonanego uchwytu mikroprzepływowego, umieszczając chip na aluminiowym dnie. Następnie umieść chip między tym dolnym elementem a silikonową uszczelką i przezroczystą plastikową górną częścią za pomocą czterech, aby zacisnąć zespół.

W przypadku typowej aplikacji tiolowej na bazie SPC, należy pokryć kroplowo 300 mikrolitrów mieszaniny 1 do 1 133 milimolowych EDC i 33 milimolowych NHS w dejonizowanej wodzie destylowanej w celu aktywacji grup karboksylowych składnika tiolowego SPC. Po odczekaniu 10 minut ręcznie spłucz powierzchnię 10-milimolowym PBS.

Następnie sprzęgnij aktywowaną grupę karboksylową z interesującym ją ligandem, pokrywając kroplami 300 mikrolitrów roztworu liganda. Po odczekaniu 1 godziny i spłukaniu powierzchni 10 milimolowym PBS, nałóż na chip 300 mikrolitrów 0,1-molowej etanoloaminy w PBS, aby zminimalizować niespecyficzne wiązanie. Po odczekaniu 10 minut przemyć etanoloaminę PBS, zawierającym 0,005% Tween 20 lub PBS-T20.

Następnie umieść kawałek kwarcu nad chipem, aby zmniejszyć wahania danych związanych ze zmieniającą się łąkotką. Utrzymuj chip mokry za pomocą bufora PBS-T20 podczas montażu na mikroskopie. Podłącz rurki mikroprzepływowe do zespołu i bufora przepływu, aż do osiągnięcia stanu ustalonego. Następnie umieść zespół końcówki LSPR w podgrzewanym stage sample holder (uchwyt na próbki).

Konfiguracja optyczna dla tej metody jest pokazana tutaj. Światło z lampy halogenowej jest przepuszczane przez filtr przepustowy o długości 593 nanometrów w celu wyeliminowania długości fal, które nie przyczyniają się do odpowiedzi nanoplazmonicznej. Światło jest następnie polaryzowane liniowo, a próbka jest oświetlana za pomocą obiektywu o aperturze numerycznej 40x 1,4 w celu wzbudzenia plazmonicznych nanostruktur złota. Rozproszone światło jest zbierane przez obiektyw i przepuszczane przez skrzyżowany polaryzator w celu zmniejszenia sygnału tła ze szklanego podłoża. Rozdzielacz wiązki 50/50 jest umieszczany w zebranej ścieżce światła w celu jednoczesnej analizy spektroskopowej i obrazowej.

Po pozostawieniu zespołu i mikroskopu do zrównoważenia przez co najmniej dwie godziny, ustaw chip za pomocą joysticka tak, aby centralny układ był wyrównany ze światłowodem do spektroskopii. Po wyhodowaniu i otuleniu komórek hybrydoma przez odwirowanie, zbierz je. Następnie przetestuj ich żywotność przed wprowadzeniem ich do chipów LSPR. Następnie należy ręcznie wprowadzić 50 mikrolitrów roztworu komórkowego na chipy LSPR za pomocą mikropipety. Na koniec zmyj pozostałe komórki w roztworze świeżą pożywką bez surowicy za pomocą systemu perfuzji mikroprzepływowej, aby przygotować chipy LSPR do obrazowania.

09:09

Bezznacznikowa technika obrazowania czasoprzestrzennego wydzielin pojedynczych komórek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:17

Analiza porównawcza ludzkiego hormonu wzrostu w surowicy przy użyciu testów SPRi, Nano-SPRi i ELISA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:42

Wytwarzanie mysich przeciwciał monoklonalnych za pomocą technologii Hybridoma

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

In-vivo detekcja oddziaływań białko-białko na powierzchniach mikrowzorowanych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:41

Wykrywanie translokacji toksyny do cytozolu gospodarza przy użyciu powierzchniowego rezonansu plazmonowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:21

Powierzchniowy rezonans plazmonów do badania oddziaływań biomolekularnych za pomocą chipa czujnika

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:35

Pomiary w czasie rzeczywistym interakcji białko-receptor błonowy przy użyciu powierzchniowego rezonansu plazmonowego (SPR)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:55

Bezznacznikowe obrazowanie pojedynczych białek wydzielanych z żywych komórek za pomocą mikroskopii iSCAT

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:12

Multimodalna platforma analityczna na multipleksowanym chipie do obrazowania powierzchniowego rezonansu plazmonowego do analizy podzbiorów pęcherzyków zewnątrzkomórkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:19

Bezznacznikowa bioanaliza rozpraszania Ramana ze wzmocnieniem powierzchniowym oparta na nanosondach Au@Carbon dot

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026