$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rozpocznij od szkiełka zawierającego utrwalone, odparafiniowane i ponownie uwodnione odcinki biopsji tętnicy skroniowej z naciekającymi komórkami odpornościowymi, w tym limfocytami i makrofagami.
Aktywowane makrofagi wyrażają receptor kwasu foliowego beta lub FR-β - marker związany z chorobą, różnicujący makrofagi od innych komórek odpornościowych.
Przenieś szkiełko do wstępnie ogrzanego bufora, aby pobrać receptory powierzchniowe.
Potraktuj sekcję nadtlenkiem wodoru, blokując wewnątrzkomórkową aktywność peroksydazy.
Wprowadź mieszankę pierwszorzędowych przeciwciał skierowanych przeciwko CD3, CD68 i FR-β, które wiążą się z komórkami odpornościowymi wyrażającymi te białka.
Dodaj biotynylowane przeciwciała drugorzędowe, wchodzące w interakcję z przeciwciałami pierwszorzędowymi i umyj.
Nakładka z enzymami sprzężonymi ze streptawidyną, które wiążą się z biotyną.
Potraktuj chromogennym substratem, który oddziałuje z enzymami, wytwarzając zlokalizowane brązowe osady.
Wprowadź przeciwbarwienie — hematoksylinę, barwiąc jądra na niebiesko.
Mikroskopowo identyfikuj małe, okrągłe, brązowo zabarwione komórki jako limfocyty wykazujące ekspresję CD3, a duże, nieregularne, brązowo zabarwione komórki jako makrofagi wykazujące ekspresję CD68 i FR-β.
Określ ilościowo makrofagi w sekcji, aby znaleźć ich stosunek do całkowitej liczby infiltrowanych komórek odpornościowych.
W celu pobrania antygenu przenieś stojak do szklanego pojemnika z 200 mikrolitrami o temperaturze 95 stopni Celsjusza, 10 milimolami na litr, buforem cytrynianu na 30 minut. Pod koniec inkubacji pozostaw szkiełka do ostygnięcia do temperatury pokojowej przez 20 minut, a następnie spłukuj bieżącą wodą przez pięć minut.
Aby usunąć endogenną aktywność peroksydazy, najpierw użyj markera hydrofobowego, aby narysować okrąg wokół każdej próbki tkanki, a następnie inkubuj próbki w 200 mikrolitrach 3% nadtlenku wodoru przez 10 minut, a następnie trzy przepłucz w 200 mikrolitrach roztworu soli fizjologicznej buforowanego Tris lub TBSS na pranie. Po ostatnim przemyciu delikatnie przetrzyj każde szkiełko, aby usunąć nadmiar buforu, a następnie dodaj 200 mikrolitrów podstawowego koktajlu przeciwciał i szkiełko nakrywkowe do każdego szkiełka na jedną godzinę inkubacji w wilgotnej komorze w temperaturze pokojowej.
Pod koniec inkubacji wyrzucić szkiełka nakrywkowe i przepłukać je trzema dwuminutowymi płukaniami w świeżej łyżce jaj. Po usunięciu nadmiaru buforu dodać 200 mikrolitrów odpowiedniego biotynylowanego roztworu przeciwciał drugorzędowych i szkiełka nakrywkowego do każdego szkiełka na 45-minutową inkubację w wilgotnej komorze w temperaturze pokojowej. Po wyrzuceniu szkiełek nakrywkowych należy je przepłukać TBSS, jak pokazano. Usuń nadmiar bufora.
Włącz sekcje 200 mikrolitrami buforu substratu DAB przez 10 minut w temperaturze pokojowej. Pod koniec inkubacji myć szkiełka TBSS i bieżącą wodą z kranu przez 10 minut, a następnie przez trzy minuty przeciwbarwić hematoksyliną. Następnie dodaj 70 mikrolitrów odpowiedniego podłoża montażowego do każdego szkiełka i powoli przechylaj szklane szkiełko nakrywkowe na podłoże montażowe, aby uniknąć tworzenia się pęcherzyków podczas opuszczania szkiełka nakrywkowego na miejsce.
W celu analizy histopatologicznej umieść szkiełko na stoliku mikroskopu świetlnego i oceń architekturę naczyniową pierwszego wycinka tkanki. Następnie określ ilościowo liczbę makrofagów w stosunku do liczby limfocytów na sekcję.