$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rozpocznij od płytki wielodołkowej zawierającej jednokomórkową zawiesinę komórek szpikowych siatkówki myszy, w tym mikrogleju, monocytów i neutrofili.
Mikroglej - lub fagocytarne komórki odpornościowe siatkówki, wykazują fluorescencję z powodu pochłoniętych znakowanych fluoroforem biocząstek pochodzenia grzybowego, wstępnie wstrzykniętych doszklistkowo.
Odwirować i dodać przeciwciała przeciwko receptorowi Fc, blokując niespecyficzne miejsca interakcji."
Wprowadź koktajl przeciwciał znakowanych fluoroforem skierowanych przeciwko białkom powierzchniowym CD11b, Ly6C i Ly6G, oddziałując z komórkami szpikowymi wykazującymi ich ekspresję.
Usuń niezwiązane przeciwciała. Traktuj jodkiem propydyny, który przenika przez uszkodzone błony, barwiąc wyłącznie martwe komórki.
W cytometrii przepływowej wzbudzić jodek propidyny, aby wykluczyć martwe komórki i zidentyfikować żywe komórki niefluorescencyjne.
Oświetl komórki fioletowym laserem; wzbudzone żywe komórki oznaczają komórki szpikowe wykazujące ekspresję CD11b.
Następnie oświetl czerwonym laserem, wzbudzając prawie daleki czerwony fluorofor w komórkach CD11b-dodatnich, wskazując monocyty eksprymujące Ly6C i neutrofile eksprymujące Ly6G.
Wzbudz komórki niebieskim laserem; emisja zielonej fluorescencji z pozostałych komórek CD11b-dodatnich potwierdza wychwyt mikrogleju przez cząstki fluorescencyjne
.
Trzy godziny po wstrzyknięciu do ciała szklistego należy użyć kleszczyków pod kątem 45 stopni, aby delikatnie docisnąć do powieki, aby podeprzeć gałkę oczną. Umieść kleszcze za gałką oczną i pociągnij. Następnie przenieś gałkę oczną do suchego obszaru szalki Petriego zawierającej niewielką objętość PBS z wapniem i magnezem pod mikroskopem preparacyjnym i użyj jednej końcówki bardzo cienkich kleszczyków, aby przebić oko w rąbku rogówki. Następnie, trzymając gałkę oczną cienkimi kleszczami pod kątem 45 stopni, użyj nożyczek sprężynowych, aby przeciąć wokół rąbka rogówki, aż zostanie przecięta mniej więcej połowa obwodu.
Przenieś gałkę oczną do PBS i użyj drugiej pary cienkich kleszczy pod kątem 45 stopni, aby rozerwać rogówkę i twardówkę. Soczewka i siatkówka wyjdą nienaruszone. Upewnij się, że soczewka i siatkówka są oddzielone i przenieś siatkówkę do 5.4-mililitrowej probówki z polistyrenu zawierającej 2 mililitry PBS z wapniem i magnezem.
Aby uzyskać jednokomórkową zawiesinę komórek siatkówki, należy użyć zestawu do dysocjacji tkanki neuronalnej zgodnie z instrukcjami producenta i ponownie zawiesić komórki w 200 mikrolitrach buforu barwiącego. Następnie przenieś próbkę do jednego dołka z 96-dołkowej płytki dolnej w kształcie litery U. Po odwirowaniu odwrócić płytkę, aby odrzucić supernatant i zablokować receptory FC za pomocą 25 mikrolitrów buforu barwiącego zawierającego przeciwciało CD16 / CD32 na studzienkę przez 5 minut w temperaturze pokojowej. Następnie oznacz komórki interesującymi je przeciwciałami przez 15 minut w temperaturze pokojowej w ciemności.
Następnie ogranuluj komórki, a następnie przemyj je w 200 mikrolitrach świeżego buforu barwiącego na studzienkę. Teraz ponownie zawieś granulki w 200 mikrolitrach buforu do barwienia i barwnika żywotności, a następnie przenieś próbki do 1,2-mililitrowych probówek do mikromiareczkowania. Następnie umyć studzienki dodatkowymi 100 mikrolitrami buforu barwiącego i barwnika żywotności, a następnie połączyć popłuczyny z odpowiednimi próbkami do analizy za pomocą cytometrii przepływowej.