Wykorzystanie dwuwarstw lipidowych wspieranych przez kulki do badania wyjścia synaptycznego z limfocytów T

0 wyświetleń3:49 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy dwuwarstwy lipidowe wspierane przez kulki lub BSLB, kulki krzemionkowe pokryte dwuwarstwami lipidowymi sprzężonymi z antygenowymi kompleksami peptyd-MHC, cząsteczkami adhezyjnymi i kostymulującymi, działającymi jak syntetyczne komórki prezentujące antygen.

Inkubować z limfocytami T.

TCR wiążą się z peptydami antygenowymi na BSLB, które wraz z sygnałami kostymulującymi tworzą synapsę immunologiczną, aktywując limfocyty T.

To wiązanie wyzwala wewnątrzkomórkowe kaskady sygnalizacyjne, indukując przegrupowanie aktyny i tworząc mikroklastry w synapsie zawierającej cząsteczki adhezyjne i sygnałowe.

Limfocyty T uwalniają pęcherzyki transsynaptyczne wzbogacone w TCR, cząsteczki kostymulujące i zawartość granulek litycznych do synapsy, wiążąc się z BSLB.

Stopniowo schładzaj kokulturę, aby oddzielić BSLB od limfocytów T.

Odwirować i wyrzucić supernatant. Użyj buforu zawierającego białko, aby zablokować wolne miejsca wiązania na powierzchniach.

Odwiruj i potraktuj BSLB i limfocyty T przeciwciałami sprzężonymi z fluoroforem, które wiążą się ze specyficznymi cząsteczkami sygnałowymi i kostymulującymi.

Za pomocą cytometrii przepływowej analizuj sygnały fluorescencyjne z BSLB i limfocytów T w celu ilościowego określenia wyjścia synaptycznego.

Ponownie zawiesić 500 000 BSLB na odwiert w 200 mikrolitrach bufora HBS/HSA. Przenieś 100 mikrolitrów BSLB na studzienkę na nową 96-dołkową płytkę z dnem w kształcie litery U, aby uzyskać duplikat, tak aby ostateczna ilość BSLB na studzienkę wynosiła 250 000. Obracaj BSLB 300 razy g przez dwie minuty w temperaturze pokojowej. Wyrzuć supernatant, a następnie ponownie zawieś BSLB za pomocą 100 mikrolitrów zawiesiny limfocytów T. Delikatnie wymieszaj, aby zapobiec tworzeniu się pęcherzyków. Inkubuj kokultury przez 90 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Chroń komórki przed światłem i schładzaj kokultury, najpierw inkubując je w temperaturze pokojowej przez co najmniej 15 minut. Odwirować kokultury w temperaturze pokojowej przez 5 minut w temperaturze 500 razy g. Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić kokultury w 2% BSA-PBS bez jonów wapnia i magnezu w temperaturze pokojowej w celu zablokowania. Umieść komórki na lodzie na 45 minut i chroń je przed światłem.

Przygotować główną mieszankę przeciwciał, używając lodowato zimnego, przefiltrowanego przez 0,22 mikrometra, 2% BSA i PBS jako buforu barwiącego. Ta główna mieszanka zapewni dodatkowe blokowanie. Wiruj kokultury w temperaturze 500 razy g przez 5 minut i 4 stopnie Celsjusza. Odrzucić supernatanty, a następnie użyć pipety wielokanałowej do ponownego zawieszenia komórek w stojącej mieszance wzorcowej zawierającej zoptymalizowane stężenia przeciwciał.

Uwzględnij komórki znakowane izotypem i BSLB, fluorescencyjne i niefluorescencyjne BSLB oraz komórki i BSLB barwione samodzielnie. Delikatnie wymieszać, pipetując w górę i w dół połowę objętości. Inkubuj przez 30 minut na lodzie i chroń je przed światłem. Umyj komórki i BSLB dwukrotnie za pomocą lodowatego 2% BSA-PBS Wiruj je w temperaturze 500 razy g przez 5 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Po odwirowaniu sprawdź kokultury osadzone na dnie studzienek. Następnie ponownie zawieś umyte kokultury w 100 mikrolitrach PBS i natychmiast uzyskaj.

09:56

Obrazowanie w superrozdzielczości synapsy immunologicznej komórek NK na płaskiej dwuwarstwie lipidowej na podłożu szklanym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:11

Mikrograwimetria dyssypatywna do badania dynamiki wiązania białka wiążącego fosfolipidy aneksyny A2 z dwuwarstwami lipidowymi na podłożu stałym za pomocą rezonatora kwarcowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:18

Montaż dwuwarstwowych modeli lipidowych naśladujących i zawieszonych w powietrzu do badania oddziaływań molekularnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:24

Obsługiwane dwuwarstwy płaskie do tworzenia badania synaps immunologicznych i kinaps

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:45

Obrazowanie synapsy wirusologicznej indukowanej przez otoczkę HIV-1 i sygnalizacji na syntetycznych dwuwarstwach lipidowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:10

Technika mikroskopii TIRF do jednoczesnego obrazowania TCR i powiązanych z nim białek sygnałowych w czasie rzeczywistym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:29

Technika in vitro do badania interakcji limfocytów T z obsługiwanymi płaskimi dwuwarstwami lipidowymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

19:05

Pomiar wiązania TCR-pMHC in situ za pomocą testu mikroskopowego opartego na FRET

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:25

Model płaskiej komórki śródbłonka do obrazowania dynamiki synaps immunologicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:34

Macierze nanoklastrów ligandów w podpartej dwuwarstwie lipidowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026