$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy dwuwarstwy lipidowe wspierane przez kulki lub BSLB, kulki krzemionkowe pokryte dwuwarstwami lipidowymi sprzężonymi z antygenowymi kompleksami peptyd-MHC, cząsteczkami adhezyjnymi i kostymulującymi, działającymi jak syntetyczne komórki prezentujące antygen.
Inkubować z limfocytami T.
TCR wiążą się z peptydami antygenowymi na BSLB, które wraz z sygnałami kostymulującymi tworzą synapsę immunologiczną, aktywując limfocyty T.
To wiązanie wyzwala wewnątrzkomórkowe kaskady sygnalizacyjne, indukując przegrupowanie aktyny i tworząc mikroklastry w synapsie zawierającej cząsteczki adhezyjne i sygnałowe.
Limfocyty T uwalniają pęcherzyki transsynaptyczne wzbogacone w TCR, cząsteczki kostymulujące i zawartość granulek litycznych do synapsy, wiążąc się z BSLB.
Stopniowo schładzaj kokulturę, aby oddzielić BSLB od limfocytów T.
Odwirować i wyrzucić supernatant. Użyj buforu zawierającego białko, aby zablokować wolne miejsca wiązania na powierzchniach.
Odwiruj i potraktuj BSLB i limfocyty T przeciwciałami sprzężonymi z fluoroforem, które wiążą się ze specyficznymi cząsteczkami sygnałowymi i kostymulującymi.
Za pomocą cytometrii przepływowej analizuj sygnały fluorescencyjne z BSLB i limfocytów T w celu ilościowego określenia wyjścia synaptycznego.
Ponownie zawiesić 500 000 BSLB na odwiert w 200 mikrolitrach bufora HBS/HSA. Przenieś 100 mikrolitrów BSLB na studzienkę na nową 96-dołkową płytkę z dnem w kształcie litery U, aby uzyskać duplikat, tak aby ostateczna ilość BSLB na studzienkę wynosiła 250 000. Obracaj BSLB 300 razy g przez dwie minuty w temperaturze pokojowej. Wyrzuć supernatant, a następnie ponownie zawieś BSLB za pomocą 100 mikrolitrów zawiesiny limfocytów T. Delikatnie wymieszaj, aby zapobiec tworzeniu się pęcherzyków. Inkubuj kokultury przez 90 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Chroń komórki przed światłem i schładzaj kokultury, najpierw inkubując je w temperaturze pokojowej przez co najmniej 15 minut. Odwirować kokultury w temperaturze pokojowej przez 5 minut w temperaturze 500 razy g. Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić kokultury w 2% BSA-PBS bez jonów wapnia i magnezu w temperaturze pokojowej w celu zablokowania. Umieść komórki na lodzie na 45 minut i chroń je przed światłem.
Przygotować główną mieszankę przeciwciał, używając lodowato zimnego, przefiltrowanego przez 0,22 mikrometra, 2% BSA i PBS jako buforu barwiącego. Ta główna mieszanka zapewni dodatkowe blokowanie. Wiruj kokultury w temperaturze 500 razy g przez 5 minut i 4 stopnie Celsjusza. Odrzucić supernatanty, a następnie użyć pipety wielokanałowej do ponownego zawieszenia komórek w stojącej mieszance wzorcowej zawierającej zoptymalizowane stężenia przeciwciał.
Uwzględnij komórki znakowane izotypem i BSLB, fluorescencyjne i niefluorescencyjne BSLB oraz komórki i BSLB barwione samodzielnie. Delikatnie wymieszać, pipetując w górę i w dół połowę objętości. Inkubuj przez 30 minut na lodzie i chroń je przed światłem. Umyj komórki i BSLB dwukrotnie za pomocą lodowatego 2% BSA-PBS Wiruj je w temperaturze 500 razy g przez 5 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Po odwirowaniu sprawdź kokultury osadzone na dnie studzienek. Następnie ponownie zawieś umyte kokultury w 100 mikrolitrach PBS i natychmiast uzyskaj.